Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Экспериментальная модель DIEP для человека для изучения стратегий сохранения васкуляризированных композитных аллотрансплантатов и свободных лоскутов

762 просмотров

⸱

DOI:

10.3791/69392

⸱

5 декабря 2025 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Plastic and Reconstructive Surgery, Institut Universitaire Locomoteur et du Sport, Pasteur 2 Hospital, Université Côte d'Azur, 2Université Côte d'Azur, CNRS, LP2M, 3Anatomy Laboratory, University of Thessaly, 4Department of Nephrology, Dialysis and Kidney Transplantation, University Hospital of Nice

В этой статье

Краткое содержание

Этот протокол описывает хирургическую технику забора модели перфораторного лоскута человека на основе глубокой нижней педикулы эпигастральной артерии, предназначенную для экспериментальных исследований.

Аннотация

В последнее время методы сохранения, такие как введение цитопротекторных средств, перфузия машины ex vivo и переохлаждение, появились как стратегии для долгосрочного сохранения как стандартных, так и маргинальных органов путём смягчения ишемических и гипоксических повреждений. Хотя его применение в области васкуляризированной композитной аллотрансплантации (VCA) в основном ограничивается доклиническими исследованиями. На сегодняшний день большинство исследований, изучающих стратегии перфузии ВКА, опирались на животные модели, особенно на свиных или грызуновых композитах. Хотя эти модели дают ценные механистические инсайты, их анатомические, иммунологические и физиологические различия ограничивают воспроизводимость и трансляционную значимость для человеческих применений.

В этом протоколе подробно описывается каждый хирургический этап, необходимый для получения глубокого нижнего перфоратора эпигастрального перфоратора (DIEP) для консервационных исследований. Перфоратор перерезан над фасцией без субфасциальной диссекции, что даёт короткий, но достаточный педикул для катетеризации. Эта модель использует выброшенные ткани из стандартных процедур абдоминопластики, не представляя дополнительного риска для пациента. Определены критически важные шаги для того, чтобы обеспечить получение функционального лоскута без продления времени операции и угрозы безопасности пациентов. Затем проводится функциональная визуализация для подтверждения жизнеспособности лоскута перед экспериментальным применением, а также могут проводиться последовательные биопсии для отслеживания целостности тканей. Эта модель особенно подходит для исследований, связанных с использованием процедур VCA, сохраняющих мышцы, таких как частичная трансплантация лица, а также может иметь значение для изучения аутологичного сохранения свободного лоскута.

Введение

Васкуляризированная композитная аллотрансплантация (VCA) представляет собой перспективное реконструктивное решение для пациентов с комплексными дефектами тканей, особенно лица и верхнихконечностей 1. Однако VCA очень подвержен повреждениям, вызванным ишемией и реперфузией, что может снижать жизнеспособность трансплантата и долгосрочные последствия2. В этом контексте методы сохранения, такие как инъекции цитопротекторных агентов, перфузия машины ex vivo и переохлаждение, стали способными продлить время сохранения, оптимизировать качество трансплантата и обеспечить оценку жизнеспособности передтрансплантацией 3,4,5,6,7. Хотя нормотермическая экс виво перфузия твердых органов была успешно перенесена из экспериментальной лабораторной техники в клиническую практику за последнеедесятилетие8 с многообещающими результатами, она в основном ограничивается исследовательской практикой в области VCA9.

На сегодняшний день большинство исследований, изучающих протоколы перфузии ВКА, опирались на животные модели, особенно на свиных или грызуновыхкомпозитах 10. Хотя эти модели дают ценные знания, они по своей сути ограничивают воспроизводимость и трансляционную значимость из-за анатомических, иммунологических и физиологическихразличий 11,12. Модели человеческих тканей дают более релевантные данные, но свежие ткани доноров с мозговой смертью чрезвычайно труднодоступны для исследовательских целей, требуя сложной логистики, строгого регуляторного одобрения и вызывая этическиевопросы 13,14. Идеальной альтернативой может быть нетрупная, этически приемлемая модель лоскута на основе человека, которая не несёт сложности или риска полноценной процедуры VCA и полностью безопасна для пациента. Важно, что он должен быть легко доступен для воспроизводимых и масштабируемых исследований.

Здесь описывается модель глубокого нижнего перфоратора эпигастрального перфоратора (DIEP) для исследований сохранения VCA, с использованием отброшенных тканей после абдоминопластики без дополнительного риска для пациента.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все пациенты получили стандартную гуманную помощь в соответствии с Хельсинкской декларацией, а протокол был утверждён институциональным этическим комитетом (проект No IRB00014528_2025_32). Пациент предоставил информированное согласие на использование выброшенной ткани в исследовательских целях.

1. Предоперационный уход

ПРИМЕЧАНИЕ: Эти кожные перфораторные лоскуты, исключая фасцию и мышцы, образуются в результате хирургических отходов у пациентов, чаще всего после бариатрии, и могут быть извлечены только в случаях предыдущей дермолипектомии с предсказуемой пуповиной (то есть значительной абдоминальной паннусом). Запланированная липосакция во время процедуры является критерием исключения. Сопутствующее восстановление диастаза не является противопоказанием, так как эта процедура проводится после удаления лоскута. Брюшной паннус обычно обеспечивает хотя бы частичное покрытие лобковой области. У пациентов не должно быть истории тромбоэмболических событий, а индекс массы тела (ИМТ) должен быть ниже 30 кг/м², так как более высокие значения связаны с ожирением и неблагоприятным соотношением риска и пользы при плановых нежизненно важных процедурах под общей анестезией. Предыдущие операции на брюшной полости, за исключением липосакции, обычно не являются противопоказанием, при условии, что перфоратор выявлен с помощью доплеровского осмотра или непосредственно визуализирован во время операции. Такую процедуру также следует избегать при настоящих клинических односторонних реконструкциях DIEP с использованием свободного лоскута, которые и так являются длительными и сложными операциями, где дополнительные предоперационные шаги были бы нерациональны и увеличивали бы процедурный риск.

  1. Проведите предоперационную маркировку дермолипектомии с пациентом в стоячем положении дермографической ручкой. Определите среднюю линию от лобкового симфиза до ксифоидного отростка и проведите поперечную линию примерно в 7 см выше комиссуры вульвы. Протяните эту линию вбок примерно на 7 см с каждой стороны, мягко изгибая её вверх, чтобы она соединилась чуть ниже передних верхних подвздошных шипов.
  2. Определите перфораторы вокруг пупка с помощью ручного акустического доплеровского зонда (8-10 МГц), когда пациент находится в положении на спине.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Нанесите небольшое количество стерильного ультразвукового геля на кожу для правильного акустического соединения. Держите зонд под углом 45° с лёгким контактным давлением, чтобы не заглушить сигнал. Сильный, трифазный пульсирующий звук указывает на перфоратор артерии. Отметьте каждый перфоратор на коже стерильным маркером, чтобы сформировать карту перфоратора, как это обычно делается до сбора DIEP лоскута.
  3. С помощью дермографической ручки обведите кожную лопатку в эллиптической форме нужных размеров, включая перфоратор вдоль медиальной границы и по обе стороны пупка (рисунок 1).
  4. Подготовьте и накройте хирургическое поле от ксифовидного отростка до верхней трети бедер, включая лобковую область, используя стерильные хирургические шторы, как это обычно выполняется в стандартной абдоминальной хирургии.

Рисунок 1
Рисунок 1: Предоперационная оценка перед постбариатрической абдоминальной дермолипектомией с забором лоскута DIEP. (A) Предоперационная маркировка с использованием акустического доплера и дермографической ручки для идентификации и контура параумбилических перфораторов по обе стороны средней линии. (B) Хирург демонстрирует обвязку кожи брюшной полости и подкожной ткани, подлежащей резецации, выделяя адипокутанный панникулус перед разрезом вдоль горизонтальной линии маркировки. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

2. Закупка клапанов

  1. Отсоедините пупок от брюшной стенки через окружной разрез до гиподермиса с помощью скальпеля No15.
  2. Наложите длинный, свободный, не впитывающийся шов по обе стороны от края пуповины.
  3. Вскрытие пуповины вертикально с помощью майо-ножниц — от поверхностной к глубокой плоскости, пока он полностью не освободится, сохраняя пуповинную педицию.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Участие ассистентов крайне важно на этом этапе. Для обнажения пупочки следует использовать ретракторы Гилли, а также мягкое продольное натяжение длинного неразасываемого шва для облегчения вскрытия. Жир вокруг пуповинной педикулы образует плотный шнур, который легко ощущается при изоляции пуповины, что позволяет точно идентифицировать и сохранять педикулы.
  4. Сделайте низкий поперечный кожный разрез вдоль предоперационной метки, примерно на 7 см выше комиссуры вульвы, плавно изгибаясь к передним верхним подвздошным шипам с каждой стороны, используя лезвие скальпеля No 15 или No21.
  5. Поднимите верхний абдоминопластикный лоскут в подкожной плоскости, начиная с нижнего разреза и продвигаясь краниально к пупку. Используйте монополярный электрокоагулятор с тонким наконечником, установленный примерно на 50-70 °C и 80 Вт в режиме коагуляции, чтобы отделить переднюю часть прямой части фасции от накрывающейся подкожной ткани и кожи, сохраняя при этом тщательный гемостаз на протяжении всей диссекции.
  6. По мере приближения к ранее изолированной педикле уменьшите температуру электрокоагуляции примерно до 20-30 °C, поддерживая мощность на уровне 80 Вт в режиме свертывания, и продолжайте тонкую диссекцию с помощью ножниц Метценбаума, чтобы избежать повреждения педикулы.
  7. Идентифицируйте и тщательно изолируйте два доминирующих параумбилических перфоратора, возникающих из глубокой нижней эпигастральной системы. Каждую перфоратор вскрыть по окружности под прямым зрением с помощью ножниц Стивенса или маленьких ножниц Метценбаума, сохраняя их сосудистые педикулы. Не растягивайте диссекцию выше уровня переднего апоневроза прямой прямой (рисунок 2).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Перфораторы выбираются по размеру; предпочтительнее те, которые при прямом зрении кажутся крупными и пульсирующеми. Вскрытие вокруг пупона должно быть тщательным, чтобы не повредить эти перфораторы.
  8. Разделите адипокутанный панникулус продолально вдоль средней линии, от центра нижнего лобкового разреза до пупка, используя лопасть No15, за которой следует монополярный электрокоагулятор, установленный примерно на 50-70 °C.
  9. Продолжайте рассечение черепно вверх до ксифовидной области и вдоль боковых реберных краёв с электрокаутером, установленным примерно на 50-70 °C, сохраняя педикулы лоскута целыми и не разделёнными (рисунок 3).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Этот этап 9 также может быть отложен по практическим причинам, если педикула затрудняет расщепление сверхумбилики и может быть выполнен после деления педикул на 12-м этапе, в зависимости от интраоперационных условий...
  10. Контролируйте незначительное кровотечение с помощью коагуляции средней интенсивности, используя стандартный монополярный электрокоагулятор с температурой 50-60 °C и 80 Вт в режиме коагуляции для поддержания точного гемостаза.
  11. Отрегулируйте контур кожной лопатки дермографической ручкой, исходя из начальных отметок, чтобы перфоратор был включён вдоль медиального края лоскута с каждой стороны адипокутанного панникула, который был разделён продоль на 8-м шаге (рисунок 4).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Чтобы избежать смещения из-за различий в площади поверхности, подвергаемой исследуемому раствору, оба закрылка (если изобраны два) должны быть одинакового размера. Толщина лоскута определяется подкожной тканью лоскута и не может быть хирургически уменьшена без риска нарушения целостности лоскута.
  12. Перевязать глубокий нижний перфоратор эпигастральной артерии с помощью резорбируемых 3-0 швов или автоматических зажимов и перерезать перфоратор выше фасции без субфасциальной диссекции. Запишите время тёплой ишемии.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Наблюдается примерно 10-минутный период ишемии лоскута перед полным отслоением и лечением инъекцией цитопротектора.
  13. Продвигайте наднадкожную кожу и подкожный жир вниз и закрепите поддельный брюшной лоскут к нижнему краю разреза в средней линии с помощью невасышивающегося шва, оставив один конец узла длинным.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Во время этого этапа поместите пациента в полусогнутое положение. Тяга вниз верхней части брюшного лоскута помогает определить, сколько избыточной кожи подлежит резекции.
  14. Используйте длинный конец средней линии невсасывающегося шва, соединяющего наднадразовые и лобковые области, чтобы с помощью дермографической ручки провести линию резекции на избыточном адипокутанном панникуле, которая простирается латерально к каждому переднему верхнему подвздошному отделу, как обычно выполняется при абдоминопластике. Заслонки DIEP расположены под этой отмеченной линией резекции (дополнительный рисунок 1).
  15. Разрезайте лоскут вдоль предоперационных отметок с помощью скальпеля No15. Извлекайте перфораторный клапан по заранее установленной конструкции, используя монополярный электрокоагулятор, установленный примерно на 50-60 °C и 80 Вт в режиме коагуляции (рисунок 5).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Это один из самых тонких этапов, так как перфоратор должен быть встроен в клапан. Рекомендуется помощь для аккуратного сцепления, при этом оператор постоянно контролирует перфоратор на протяжении всего вскрытия. Вскрытие холодным ножом не рекомендуется, так как это может нарушить целостность лоскута и привести к кровососудистым протеканиям.
  16. Полностью отсоедините перфораторный лоскут от окружающей выброшенной ткани.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если собрать два лоскута и подвергнуть разным обработкам, их можно отличить, наложив шов на один из них.
  17. Удалить избыточную дерможировую ткань, соответствующую избыточной коже и жиру, удалённым во время абдоминопластики.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если перфораторный лоскут извлекается после удаления избыточной дермо-жировой ткани по практическим причинам, используйте стерильную одноразовую одноразовую коагуляторную ручку на батарейках (большой наконечник, примерно 1 200 °C) для завершения отслоения. В такой ситуации возвратный электрод нельзя, так как ткань полностью отделена от пациента. После удаления DIEP-лоскутов хирургическая команда передаёт их исследовательской группе, ожидающей в операционной, затем проводит абдоминопластику, вскрывая вдоль заранее отмеченных линий резекции для отсоединения и удаления избыточного адипокутанного панникулуса.

Рисунок 2
Рисунок 2: Интраоперационный вид операции абдоминальной дермолипектомии с скелетизацией глубоко нижней перфораторной педикулы эпигастральной перфорации. На изображении показано оперативное поле перед супраумбиликальной диссекцией и продольной инфраумбилиальной делением. Два доминирующих двусторонних глубоко нижних эпигастральных перфораторов обнажают и подсвечивают хирургическими инструментами. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 3
Рисунок 3: Интраоперационный обзор после надумбиличной диссекции, показывающий двусторонние глубокие нижние перфораторы эпигастральной кости. Перфораторы не лигируются, и их подфасциальный путь и длина лучше оцениваются при мягком натяжении (белые стрелки). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 4
Рисунок 4: Интраоперационный вид, показывающий DIEP-лоскуты, очерченные на коже эллиптической формой перед перевязкой. (A) Кожная лопатка регулируется и обводится эллиптической формой с помощью дермографического пера (белый круг) для обеспечения включения перфоратора вдоль медиального края лоскута по обе стороны адипокутанного панникула. (B) Увеличенный вид, показывающий контур DIEP и перфоратор, отмеченный «x» согласно дооперационному доплеровскому отображению (белая стрелка). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

Дополнительный рисунок 1: Тяга вниз верхнего брюшного лоскута помогает определить количество избыточной кожи, которую нужно удалить. Длинный конец средней линии невсасывающегося шва, соединяющего супраумбиливальную и лобковую области, используется в качестве ориентира. Дермографической ручкой проведите линию резекции вдоль линии шва (белые стрелки) на избыточном адипокутанном панникуле. Протяните эту линию вбок к каждому переднему верхнему подвздошному позвоночнику. Заскрылки DIEP расположены ниже этой отмеченной линии резекции. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы скачать этот файл.

Рисунок 5
Рисунок 5: Интраоперационный вид глубоких перфораторных лоскутов верхней нижней эпигастральной артерии (DIEP) во время забора забора после перевязки педикулы. (A) Лоскут DIEP, размером примерно 10 см × 6 см, обведён хирургическим маркером после локализации перфоратора. (B) Разрез кожи и забор лоскута выполняются по заранее установленным меткам. Начальный разрез выполняется лезвием No15, затем вскрытие с использованием монополярного электрокоагуляторного средства при температуре примерно 50-60 °C и 80 Вт в режиме свертывания, когда избыточная кожно-жировая ткань остаётся прикреплённой к пациенту. После полного отсоединения ткани используется стерильная, одноразовая батарейная одноразовая ручка для коагуляции (большой кончик, примерно 1 200 °C). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

3. Подготовка клапана

  1. Вскрытие сосудистого педикула при увеличении с помощью микрохирургических приборов и идентификация как артерии, так и вены (рисунок 6). Аккуратно откройте просвет артерии с помощью микроваскулярного дилататора.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте специальный стерильный стол с микрохирургическими инструментами для подготовки клапана. Обрежьте 2-3 мм от конца артерии, чтобы получить чистый, ровный край, подходящий для катетеризации.
  2. Взвешивайте каждый лоскут во время сбора урожая, чтобы позже можно было количественно оценить образование отёка.
  3. Катетеризуйте артерию с помощью канюли 18-24 G и закрепите её в просвете с помощью 5-0 швовой связки (рисунок 7).
    ПРИМЕЧАНИЕ: В этом эксперименте лоскуты были катетеризованы с помощью канюли размером 24G, поскольку исследование включало оценку цитопротекторных агентов с помощью одной инъекции. Для применения экс виво аппаратной перфузии или экстракорпоральной мембранной оксигенации (ЭКМО) каннулирование следует выполнять с помощью более крупной канюли 18-20 G. В случае окклюзии катетера во время экс виво перфузии аккуратно промывайте гепаринизированным физиологическим раствором или заменяйте канюлю для восстановления кровотока. Поддержание низкого давления перфузии (<25 мм рт. ст.) помогает предотвратить рецидив.
  4. Вводите контрастное вещество внутриартериально через катетер в перфораторную артерию и оценивайте лоскут на флюороскопии (рисунок 8).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Контрастное вещество должно равномерно делать малые капилляры радиопакой по всему лоскуту, что указывает на адекватную область перфузии, обеспечиваемую выбранной педикулой. На этом этапе наличие неперфузированных участков может сделать модель непригодной для дальнейших исследований или потребовать удаления дистальной части лоскута. Собранные клапаны могут впоследствии использоваться для экспериментальных протоколов, помещаться на перфузионный аппарат, устройство ЭКМО или вводиться с тестовым раствором в качестве цитопротекторных средств. Биопсии пумпирования (диаметром от 1 мм до 8 мм) могут проводиться в разных временных точках без ущерба целостности лоскута, что позволяет кинетически оценить гистологические изменения в тканях.

Рисунок 6
Рисунок 6: Вид после забора исследовательского лоскута DIEP. (A) Полученный лоскут DIEP показан с рассечением и изоляцией сосудистого педикула с помощью микрохирургических щипцов. Конец артерии обрезается на несколько миллиметров для получения аккуратного разреза, а просвет аккуратно открывается с помощью микродилататорных щипцов. (B) Крупный план, на котором микрохирургические щипцы закрепляют доминирующую перфораторную артерию, с катетером, введённым в просвет 24G для инъекции контрастного вещества. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 7
Рисунок 7: Катетеризация педикулы лоскута DIEP. (A) Катетер закрепляется швом 5-0, аккуратно завязанным, чтобы не закрывать просвет педикула. (B) Вид катетера без прикреплённого шприца, показывающий степень введения катетера в сосудистый просвет. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 8
Рисунок 8: Флюороскопия лоскута DIEP после уборки, демонстрирующая сосудистую анатомию. (A,B) Контрастное вещество вводится через катетер размером 24 G в доминантную перфораторную артерию, показывая разветвленный узор и сосудистую область, подтверждая жизнеспособность лоскута на двух разных лоскутах. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Одиннадцать лоскутов были взяты у шести женщин, включённых в это исследование. Два опытных пластических хирурга, опытные в лоскутной хирургии и абдоминопластике, провели вскрытие. У одного пациента лоскут был взят в одностороннем порядке из-за проблемы с вскрытием. Собранные закрылки имели средний вес 198,6 ± 24,4 г (n = 11) и средний размер 10 см × 6 см, что соответствовало требованиям к выборке для исследования сохранения, в котором использовались эти закрылки. Длина педикулы, измеренная при лёгком натяжении, составлял...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Человеческие модели помогают связать результаты из исследований на животных с клинической практикой, повышая актуальность и предсказательность доклиническихисследований 16,17,18. Они должны быть тщательно разработаны для обеспечения безопасности и этического соответствия, часто ограничивая масштаб и инвазивностьэкспериментов 17. На четырёх собранных лоскутах дополнительное вскрытие не требовалось, и в одн...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Авторам нечего раскрывать.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Шприц Luer-Lok объемом 1 мл и 5 млБектон Дикинсонhttps://www.bd.com/en-us/products-and-solutions/products/product-page.309646
11,5" Средний и малый премиальный Surgiclip II Auto Suchure Salsel ClipКовидьенН/Д
22– Тупой кончик канюли сосуды 24 GMedtronic IncН/Д
5-0 шелковый шов  Н/ДЛюбой совместимый шов
Одноразовая батарейная одноразовая коагуляторная ручка;Helpmedical, ЕвропаН/Д1200 градусов; C, с большим наконечником
Щипцы АдсонаMPM106-2112A
Биполярные коагуляционные щипцыОлсен20-1320I
Одноразовый скальпель #15 и #21СкларН/Д
Eosin Microm MicrotechU/C0363
Ретракторы ФарабёфаМедикта ИнструментсН/Д
Коагуляция с тонкой иглойCormedicaН/Д
OEC MiniView MaxGE HealthcareН/ДСистема флюороскопии
Дилататоры с щипцамиWPI15910
Гематоксилин Microm MicrotechU/C0303
Иогексол 300 мг I/mLGE Healthcare Canada Inc.Н/Д
МикроножницыWPI504492
Монополярная диатермия ValleylabMedtronic Inc
Неионная йодированная контрастная среда, Omnipaque 300 мг I/mLGE HealthcareН/Д
Портативный акустический доплер, 8 МГцParks Medical Electronicshttps://www.parksmed.com/
Солевый раствор 0,9%GenDepotS0600-101
Стандартный набор инструментов для пластической хирургииЭскулапН/Двключая рукоятку скальпеля No3, ножницы Метценбаума и Майо, щипцы Адсона и Гиллиса, ножницы для препарирования, гемостаты и держатели для игл.
Козубые ножницыSurtex102-4109
Хирургическая маркировочная ручкаКардинальное здоровье212PR
Швы Ethilon 4.0 и 3.0Ethicon1667G
Тканевые щипцыMPM106-0511

Ссылки

  1. Lupon, E., et al. vascularized composite allografts in france: An update. Ann Chir Plast Esthet. , (2024).
  2. Messner, F., Grahammer, J., Hautz, T., Brandacher, G., Schneeberger, S. Ischemia/reperfusion injury in vascularized tissue allotransplantation: Tissue damage and clinical relevance. Curr Opin Organ Transplant. 21 (5), 503-509 (2016).
  3. Berkane, Y., et al. advances and perspectives in vascularized composite allotransplantation preservation. Bull Acad Natl Med. 208, 1299-1308 (2024).
  4. Baker, C. E., et al. Pretreatments of ex vivo vascularized composite allografts: A scoping review. Ann Plast Surg. , (2025).
  5. Njessi, P., et al. Preservation strategies for vascularized composite allotransplantation: An updated systematic review of a rapidly expanding field. bioRxiv. , (2025).
  6. Cougnon, M., et al. Inhibition of eif5a hypusination enhances antioxidant defense to prevent kidney ischemia/reperfusion injury. Redox Biol. 86, 103814(2025).
  7. Le Meur, Y., et al. First-in-human use of a marine oxygen carrier (m101) for organ preservation: A safety and proof-of-principle study. Am J Transplant. 20 (6), 1729-1738 (2020).
  8. Nicholson, M. L., Hosgood, S. A. Renal transplantation after ex vivo normothermic perfusion: The first clinical study. Am J Transplant. 13 (5), 1246-1252 (2013).
  9. Muss, T. E., et al. Ex-vivo perfusion of limb vascularized composite allotransplants: A systematic review of published protocols. Transpl Int. 38, 14132(2025).
  10. Muss, T. E., et al. A guide to the implementation and design of ex vivo perfusion machines for vascularized composite allotransplantation. Plast Reconstr Surg Glob Open. 12 (11), e6271(2024).
  11. Mcgonigle, P., Ruggeri, B. Animal models of human disease: Challenges in enabling translation. Biochem Pharmacol. 87 (1), 162-171 (2014).
  12. Pound, P., Ritskes-Hoitinga, M. Is it possible to overcome issues of external validity in preclinical animal research? Why most animal models are bound to fail. J Transl Med. 16 (1), 304(2018).
  13. Pirnay, J. P., et al. Access to human tissues for research and product development: From eu regulation to alarming legal developments in belgium. EMBO Rep. 16 (5), 557-562 (2015).
  14. Charmode, S., Ratanpara, L., Sheikh, N., Ravi, K. S., Mehra, S. Legal frameworks upholding deceased individuals' rights and enabling the use of cadavers in anatomy education and research: A systematic review. Cureus. 16 (4), e58473(2024).
  15. Lupon, E., et al. Engineering Vascularized Composite Allografts Using Natural Scaffolds: A Systematic Review. Tissue Eng Part B Rev. 28 (3), 677-693 (2022).
  16. Van Lier, D., Geven, C., Leijte, G. P., Pickkers, P. Experimental human endotoxemia as a model of systemic inflammation. Biochimie. 159, 99-106 (2019).
  17. Olesen, A. E., Andresen, T., Staahl, C., Drewes, A. M. Human experimental pain models for assessing the therapeutic efficacy of analgesic drugs. Pharmacol Rev. 64 (3), 722-779 (2012).
  18. Littman, B. H., Williams, S. A. The ultimate model organism: Progress in experimental medicine. Nat Rev Drug Discov. 4 (8), 631-638 (2005).
  19. Ozturk, M. B., et al. Extracorporeal free flap perfusion using extracorporeal membrane oxygenation device: An experimental model. Ann Plast Surg. 83 (6), 702-708 (2019).
  20. Kreidstein, M. L., Pang, C. Y., Levine, R. H., Knowlton, R. J. The isolated perfused human skin flap: Design, perfusion technique, metabolism, and vascular reactivity. Plast Reconstr Surg. 87 (4), 741-749 (1991).
  21. Parente, A., et al. Machine perfusion techniques for liver transplantation - a meta-analysis of the first seven randomized-controlled trials. J Hepatol. 79 (5), 1201-1213 (2023).
  22. Drivas, E. M., et al. Reply: A guide to the implementation and design of ex vivo perfusion machines for vascularized composite allotransplantation. Plast Reconstr Surg Glob Open. 13 (5), e6763(2025).
  23. Lupon, E., et al. A new method for preparation of decellularized human scaffolds for facial reconstruction. Curr Issues Mol Biol. 47 (4), (2025).
  24. Lupon, E., et al. Optimized decellularization of a porcine fasciocutaneaous flap. Bioengineering (Basel). 11 (4), (2024).
  25. Moris, D., Cendales, L. C. Sensitization and desensitization in vascularized composite allotransplantation. Front Immunol. 12, 682180(2021).
  26. Perraudin, T., et al. Vascularized composite hand allograft procurement and preparation for distal and proximal forearm allotransplantation: A stepwise approach. J Vis Exp. (219), e67767(2025).
  27. Perraudin, T., et al. Vascularized composite upper limb allograft harvesting for proximal arm allotransplantation. J Vis Exp. (220), e68170(2025).
  28. Barbat, P., et al. Procurement for a vascularized and reinnervated abdominal wall allotransplantation. J Vis Exp. (221), e68418(2025).
  29. Lupon, E. Perforator identification for propeller flap harvest: Technical insights from a case serie. Int J Surg Case Rep. 135, 111921(2025).
  30. Villavisanis, D. F., et al. Assisting in microsurgery: Operative and technical considerations. J Hand Surg Glob Online. 5 (3), 358-362 (2023).
  31. Saaiq, M., Zaib, S., Ahmad, S. Electrocautery burns: Experience with three cases and review of literature. Ann Burns Fire Disasters. 25 (4), 203-206 (2012).
  32. Pomahac, B., Diaz-Siso, J. R., Bueno, E. M. Evolution of indications for facial transplantation. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 64 (11), 1410-1416 (2011).
  33. Barret, J. P. From partial to full-face transplantation: Total ablation and restoration, a change in the reconstructive paradigm. Int J Surg. 12 (2), 109-112 (2014).
  34. Dubernard, J. M., et al. Outcomes 18 months after the first human partial face transplantation. N Engl J Med. 357 (24), 2451-2460 (2007).
  35. Barklin, A. Systemic inflammation in the brain-dead organ donor. Acta Anaesthesiol Scand. 53 (4), 425-435 (2009).
  36. Slater, N. J., et al. Ex-vivo oxygenated perfusion of free flaps during ischemia time: A feasibility study in a porcine model and preliminary results. J Surg Res. 205 (2), 292-295 (2016).
  37. Lupon, E., et al. Microsurgery in low- and middle-income countries: Results of 20 years of experience in cambodia. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 98, 161-169 (2024).
  38. Berkane, Y., et al. Reconstruction of a complex foot defect with a chimeric triple-component osteocutaneous scip-siea free flap: A case report and literature review. Arch Plast Surg. 52 (5), 310-316 (2025).
  39. Albadia, R., et al. Management of a large abdominal dermatofibrosarcoma protuberans requiring a life-threatening excision: A case report. Int J Surg Case Rep. 133, 111579(2025).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Васкуляризированный композитный аллотрансплантатсохранение свободного лоскутамодель перфузии человекацитопротекторные препаратымашинная перфузияишемическое повреждениемикрососудистая диссекцияартериальная катетеризациягистологический анализ
Экспериментальная модель DIEP для человека для изучения стратегий сохранения васкуляризированных композитных аллотрансплантатов и свободных лоскутов
Связаться с нами
Порекомендовать библиотеке

Конфиденциальность

Условия использования

Политики

© 2026 MyJoVE Corporation. Все права защищены.