$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Эксперименты проводились в соответствии с Руководством по уходу и использованию лабораторных животных Национальных институтов здоровья (NIH Publication No. 8023, пересмотренное в 1978 году). Протокол был утверждён Этическим комитетом университета Яньтай (Утверждение No YTDX20240526). Опасные материалы утилизировались в соответствии с институциональными протоколами по химическим отходам. Рисунок 1 иллюстрирует схему экспериментального проекта. Реагенты и используемое оборудование перечислены в Таблице материалов.
1. Характеристики животных
Самцы мышей CD-1 весом 22-25 г содержались в комнате с циклом 12/12 часов свет/тьма. Животные могли свободно получать еду и воду.
2. Подготовка модели мыши ICH
Мышиная модель ICH была установлена согласно предыдущемуотчету 11. Кратковременно мышей анестезиировали ксилазином (10 мг/кг) и кетамином (90 мг/кг), затем помещали в стереотаксичную рамку. В правом корональном шве (2,2 мм латерально от средней линии, 0,2 мм позади брегмы) был просверлен небольшой отверстие для жернова. Микрошприц был введён в правое полушарие на глубине 3,5 мм от поверхности черепа. С помощью микроинфузионного насоса бактериальная коллагеназа (0,075 U в 0,5 мкл фосфатно-буферного физиологического раствора [PBS]) была введена со скоростью 0,15 мкл/мин. Иглу аккуратно убрали через 5 минут. Мыши в фиктивной группе получали эквивалентный объём PBS вместо коллагеназы. Запечатал отверстие для заусенцев костным воском, и разрез на коже головы был зашит. Температура тела животных поддерживалась на уровне 37°C до пробуждения.
3. Экспериментальное проектирование
Самцы мышей CD-1 были случайным образом распределены на три группы: фиктивные, модельные и лансопразол. Модель ICH была установлена, как описано выше. Через тридцать минут после индукции КГГ мыши из группы лансопразола получали лансопразол в дозе 30 мг/кг (доза лансопразола была выбрана согласно предыдущемуотчету 12), вводящий один раз в день в течение трёх последовательных дней. Мыши в фиктивной и модельной группах получали внутрибрюшинные инъекции PBS. Через 3 дня после НКГ краткосрочное неврологическое состояние оценивалось с помощью теста Гарсии, теста на расположение передних конечностей и ротародного теста. На 29-й день после индукции НГГ были проведены новые тесты на распознавание объектов и водный лабиринт для оценки долгосрочной неврологической функции.
4. Тест Гарсии
Два исследователя, ослеплённые к группе, провели тест Гарсии согласно ранее сообщенномупротоколу 13. Неврологическая функция оценивалась с помощью системы оценки от 0 до 21. Оценка состоит из семи подтестов, каждый из которых оценивается от 0 до 3 (0 = худший, 3 = лучший).
5. Тест на расстановку передних конечностей
После теста Гарсии тест на расстановку передних конечностей проводился по ранее описанномуметоду 14. Мышей держали вертикально, параллельно столу, позволяя их вибрассам скользить по поверхности. Расположение передних конечностей наблюдалось в 10 последовательных исследованиях. Процент расположения левой передней конечности был рассчитан следующим образом: Положение левой передней конечности / (расположение левой передней конечности + положение правой передней конечности) × 100%.
6. Тест Rotarod
После теста на переднюю конечность мышей помещали на вращающуюся удочку со скоростью 5 об/мин на 3 минуты для тренировки. Стержень ускорялась с 5 об/мин до 30 об/мин за 4 минуты. Длительность каждой мыши на удочке фиксировалась в течение 5 минут, а задержка выхода —15.
7. Анализ проницаемости кишечника и отёка мозга
После ротародного теста случайным образом выбирали по шесть мышей из каждой группы. Согласно предыдущемуметоду 16, FITC-декстран вводился внутрижелудочно в дозе 300 мг/кг. Три часа спустя мышей анестезиировали изофлураном, а кровь была взята из ретроорбитального венозного сплетения, центрифугирована при 4 °C и 11 000 × г в течение 5 минут. Содержание FITC-декстран измерялось с помощью считывателя флуоресцентных пластин при возбуждении 485 нм и длинах волн излучения 528 нм. Животным затем обезглавливали, а правое полушарие мозга было взято и взвешено для получения влажного веса. Ткань сушили при 100 °C в течение 24 часов для определения сухого веса. Содержание воды в мозге (%) рассчитывалось так: [(Влажный вес − Сухой вес) / Влажный вес] × 100%.
8. Оценка проницаемости гематоэнцефалического барьера (BBB)
После ротародного теста случайным образом выбирали шесть мышей из каждой группы для оценки проницаемости BBB. Внутрибрюшинно вводился 2% синий раствор Эванса при 4 мл/кг. Три часа спустя мыши были анестезиированы изофлураном и проведена транскардиальная перфузия с помощью PBS. Правое полушарие мозга было гомогенизировано 50% трихлоруксусной кислотой в соотношении 3:1 (мозговая ткань: трихлоруксусная кислота). Гомогенат центрифугировали при 15 000 × г и 4 °C в течение 20 минут. Затем 500 мкл супернатанта смешивались с 500 мкл этанола 70% и инкубировали ночью при 4 °C в темноте. Концентрация синего цвета Эванса измерялась на расстоянии 610 нм и количественно измерена с помощью стандартной кривой. Данные представлены в виде мкг синего цвета Эванса на мг ткани мозга.
9. Гистопатологическое исследование кишечника и мозга
После ротародного теста случайным образом выбирались три мыши из каждой группы. Мышей анестезиировали изофлураном. Ежуна, подвздошная клетка и мозг были собраны и закреплены в 10% формальдегиде. Ткани были разрезаны толщиной 5 мкм и проведено окрашивание гематоксилин-эозином (HE). Гистопатологическое исследование кишечника и мозга проводилось под микроскопом двумя экспериментаторами, которые были ослеплены групповыми заданиями. Количество микроглий, окружающих гематому, учитывалось в репрезентативных срезах. Подсчёт клеток проводился в пяти произвольных зрительных полях по трём секциям на животное.
10. Измерение LPS и IL-1β
После ротародного теста случайным образом выбирали по шесть мышей из каждой группы. Мышей анестезиировали изофлураном, и взяли кровь. Образцы крови были центрифугированы при 5 000 × г и 4 °C в течение 10 минут, после чего был собран сыворотка. Правое полушарие мозга было извлечено, и гомогенаты мозга были подготовлены в соотношении 1:3 (масса мозга в граммах к объёму PBS в миллилитрах). Гомогенаты центрифугировали при 12 000 × г и 4 °C в течение 10 минут. Концентрации белка в супернатанте были определены с помощью набора BCA. Уровни ЛПС и IL-1β как в сыворотке, так и в гомогенате мозга измерялись с помощью наборов ИФА в соответствии с инструкциями производителя.
11. Трансмиссионная электронная микроскопия
Для электронномикроскопического исследования по три животных из каждой группы были случайным образом отобраны после ротародного теста. Мыши были анестезиированы изофлураном и прошли транскардиальную перфузию с 2% глутаральдегида и 2,5% параформальдегида в 0,1 млн PBS (согласно утверждённым институционально протоколам). Затем мозг, ежунный и подвздошный слой были извлечены и помещены в 2% глутаральдегид в буфер какодилата 0,1 М (pH 7,4) при 4 °C ночью. Затем образцы были перенесены в 1% тетроксид осмия в течение 1 часа при комнатной температуре. Ткани разрезались на ультратонкие срезы (50 нм). После обезвоживания срезы окрашивались уранилацетатом и свинцовым цитратом для наблюдения под трансмиссионным электронным микроскопом. Все секции оценивались вслепую и фотографировались с помощью трансмиссионного электронного микроскопа.
12. Распознавание новых объектов
Через 29 дней после моделирования ICH был проведён новый тест на распознавание объектов для оценки функции обучения и памяти мышей. В первый день в аппарате не помещались предметы (длина: 40 см, ширина: 40 см, высота: 40 см), что позволяло мышам свободно исследовать его в течение 5 минут. На второй день в аппарат поместили два одинаковых предмета, и мышам разрешили исследовать их в течение 5 минут. Через двадцать четыре часа один из объектов был заменён на новый объект. Мыши снова исследовали два объекта в течение 5 минут. Время исследования фиксировалось, когда нос мыши касался объекта или когда её голова была ориентирована на объект на расстоянии 1 см. Время, потраченное на исследование нового объекта, было измерено и рассчитано. Более длительное исследование нового объекта свидетельствует о лучшем обучении и запоминании.
13. Водный лабиринт Морриса
Через 32 дня после моделирования ICH были оценены функции обучения и памяти с помощью водного лабиринта Морриса. Аппарат представлял собой круглый бассейн (диаметр: 100 см, высота: 40 см), заполненного водой (глубина: 25 см), поддерживаемого при температуре 22 °C ± 1 °C. Платформа для спасения (диаметр: 9 см) была погружена на 1 см ниже поверхности воды. В навигационном испытании мыши проходили четыре испытания в день. Время, потраченное на поиск платформы, фиксировалось как задержка побега. Мыши, не смогли найти платформу в радиусе 60 секунд, аккуратно направлялись к ней. На пятый день был проведён тест зонда 60 секунд. Функция памяти оценивалась путём записи задержки выхода, количества пересечений платформы и времени, проведённого в целевом квадранте. Данные анализировались с помощью программного обеспечения для видеоотслеживания.
14. Статистический анализ
Данные анализировались с помощью программного обеспечения GraphPad Prism версии 7.0. Результаты представлены в виде среднего ± стандартного отклонения. Тест Шапиро-Уилка использовался для оценки того, следуют ли данные каждой группы нормальному распределению. Различия между группами анализировались с помощью одностороннего ANOVA, а затем пост-хок теста Тьюки. Для непараметрических сравнений использовался тест Крускаля-Уоллиса, за которым следовал тест Данна. p-значение <0,05 считалось статистически значимым.