Методическая статья

Создание модели периимплантита у крыс с помощью установки имплантата из верхнечелюстного титана и индукции гингивалис-лигатуры Porphyromonas

DOI:

10.3791/69682

⸱

6 марта 2026 г.

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Prosthodontics, The Affiliated Stomatological Hospital, Southwest Medical University, 2School of Stomatology, Southwest Medical University, 3Institute of Stomatology, Southwest Medical University, 4Orofacial Reconstruction and Regeneration Laboratory, Southwest Medical University, 5The First People's Hospital of Yibin, 6The Second People's Hospital of Deyang, 7Department of Periodontics & Oral Mucosal Diseases, The Affiliated Stomatology Hospital, Southwest Medical University

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

В этом исследовании была установлена модель периимплантита у крыс с использованием имплантов из верхнечелюстного титана, включающую удаление зубов, хирургическую имплантацию титановых фиксаторов и последующую индукцию воспалительной потери костной ткани посредством размещения лигатуры, пропитанной гингивалисом Porphyromonas, вокруг шеи импланта после заживления.

Аннотация

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Периимплантит (ПИ) является одной из ведущих причин отказа зубных имплантов, характеризующимся воспалительными поражениями мягких тканей и прогрессирующей потерей костной ткани, что требует надёжных животных моделей для механистических и терапевтических исследований. В этом исследовании была создана новая модель крыс, которая синергетически сочетает механическое раздражение с бактериальной инфекцией для лучшего имитирования патогенеза человеческого PI. После удаления первых моляров верхнечелюстной челюсти у 12 самцов крыс Спраг-Доули (4 недели) и 8-недельного периода заживления были установлены титановые импланты. Через 4 недели остеоинтеграции группа PI (n = 6) получила лигатуры, пропитанные Porphyromonas gingivalis (P. gingivalis) вокруг шеи имплантата, тогда как отрицательная контрольная группа (NC) (n = 6) не получила лечения лигатурой. Через две недели после индукции анализы с помощью микрокомпьютерной томографии (микро-КТ) и гистологии выявили значительную альвеолярную потерю костной ткани и тяжелое воспаление мягких тканей, включая выраженную инфильтрацию воспалительных клеток и разрушение тканей, в группе с ПИ по сравнению с группой NC. Эта валидированная модель эффективно повторила ключевые особенности клинического PI. Его ограничения включают упрощённую сложность монопатогена и ускоренный ход заболевания по сравнению с человеческим PI. Тем не менее, она предоставляет надёжный и клинически значимый инструмент для исследовательских и терапевтических исследований.

Введение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

С развитием протезной стоматологии зубные имплантаты получают постоянно расширяющееся клиническоеприменение. Однако периимплантит (ПИ), как наиболее распространённое осложнение, значительно снижает долгосрочную выживаемость зубных имплантов и приводит к устойчивым негативным последствиям для здоровья полости ртапациентов 2. ПИ — патологическое воспалительное состояние периимплантатических тканей, в основном вызванное дисбиозом микробиоплёнки бляшек, и характеризуется прогрессирующим воспалением мягких тканей периимпланта и последующей потерей поддерживающей кости 3,4. При оценке распространённости на уровне пациентов и имплантов в 19,53% и 12,53%соответственно 5, а также учитывая сложность и дорогостоящий характер его управления, ПИ представляет собой значительную клиническую и общественную медицинскуюнагрузку 6.

Разъяснение сложного патогенеза PI и разработка эффективных терапий в основном опираются на надёжные животные модели, которые точно воспроизводят человеческоезаболевание 7,8. Хотя крупные животные модели, такие как собаки и минисвинки, имеют анатомические сходства, их использование в глубоких механистических исследованиях ограничено высокими затратами, этическими и жилищными вопросами, а также отсутствием молекулярных инструментов, специфичных длявидов 9. Модели грызунов, напротив, демонстрируют преимущества экономической эффективности, более простого обращения и широкой генетической манипулятивности, что облегчает детальное исследование молекулярныхпутей 10. Модель мыши, однако, часто ограничена своим малым размером и техническими сложностями хирургическихпроцедур 11. Эти ограничения усугубляются процедурными проблемами в устоявшихся методах, такими как фокальная природа и преждевременная потеря связки, характерные для мышиных пародонтитамоделей 12. Крыса выступает как прагматичный компромисс, предлагая более широкое поле для операций, доказанную полезность в исследованиях заживления костей и доступность трансгенных штаммов для изучения специфических генетическихфакторов 13, что делает её очень подходящим кандидатом для моделирования ПИ. Несмотря на потенциал, внедрение моделей PI на крыс ограничено техническими тонкостями хирургических процедур, включая надёжное удаление зубов и стабильное размещение имплантов.

Существующие методы индукции в модели крыс включают установку шелковойлигатуры 14,15, инокуляцию местногопатогена 16 и инъекцию липополисахаридов17. Предыдущие модели инфекций, основанные на пероральном бактериальном промывании, часто приводили к нестабильному образованию биоплёнки и непоследовательным воспалительнымреакциям 18. Метод шёлковой перевязки распространён для стимулирования быстрого накопления налёта. Однако только перевязка создаёт нефизиологический механический ущерб и не включает контролируемый патогенный вызов, что недостаточно отражает этиологию инфекционных заболеваний изPI 19. Моноинфекция патогенами, такими как P. gingivalis, напротив, часто испытывает трудности с формированием стабильной биопленки и может не всегда вызывать сильноевоспаление 20. Мы выдвигаем гипотезу, что процедура перевязки вызывает двойное повреждение: шелковый шов действует как механический раздражитель и каркас для формирования сложной биопленки, а доставленный ключевой патоген P. gingivalis вызывает и поддерживает дисбиотическийвоспалительный ответ 21. Для визуального обобщения этого интегрированного двойного патогенного подхода и его временного прогрессирования приводится схематический обзор экспериментальной процедуры и сроков создания этой комбинированной модели крыс P. gingivalis-ligation (рисунок 1). В этой статье подробно описывается создание и валидация этой комбинированной модели P. gingivalis-ligation, предназначенной для надёжного воспроизведения критически важной патологии костей и мягких тканей человеческого ПИ, тем самым повышая клиническую значимость и полезность модели для доклинических исследований.

Рисунок 1
Рисунок 1: Схематическая диаграмма хронологии экспериментальной процедуры для создания модели периимплантита у крыс, вызванной методом перевязки швами с бактериями. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой рисунка.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Размер выборки определялся на основе распространённых практик в ранее опубликованных моделях периимплантита грызунов (PI) и ограничений доступныхресурсов 22. Двенадцать 4-недельных самцов крыс рода Спраг-Доули (предоставлены Центром экспериментальных животных Юго-Западного медицинского университета, лицензия No: SCXK (Chuan) 2024-0046) использовались для удаления зуба, установки имплантов и индукции ПИ. Все крысы содержались в стандартном специализированном барьерном помещении без патогенов (SPF), а животные из разных экспериментальных групп содержались отдельно. Расположение клеток внутри стойки было рандомизировано каждую неделю. Крысы были распределены либо в отрицательную контрольную (NC), либо в группу PI (n = 6 на группу) с помощью генератора случайных чисел. Порядок хирургических процедур у всех крыс рандомизирован. Все процедуры одобрены Комитетом по этике исследований животных Юго-Западного медицинского университета (Approval No. 20241111-012) и соответствуют рекомендациям по благополучию животных. Это исследование проводится в соответствии с принципами 3R (Замена, Редукция, Уточнение) для этичных исследований на животных. Реагенты и используемое оборудование перечислены в Таблице материалов.

1. Подготовка до экстракции

  1. Стерилизуйте все хирургические инструменты (#5 dental explorer, держатель для иглы, офтальмологические щипцы, медицинские ватные палочки, тканевые щипцы и др.) с помощью автоклава. Выполняйте все последующие процедуры в шкафе класса II для поддержания асептических условий.
  2. Ввести внутрибрюшинную инъекцию триброметанола (250 мг/кг) для анестезиикрыс 23 (согласно утверждённым институциональными протоколами). Подтвердите глубину анестезии по отсутствию отменного рефлекса в ответ на защипывание задней лапы.
  3. Нанесите офтальмологическую смазку для предотвращения высыхания роговицы во время процедур.
  4. Тщательно продезинфицируйте все рабочие поверхности с помощью раствора этанола 75%.
  5. Разместите крысу в положении на спине на устойчивой хирургической платформе. Втяните верхнюю и нижнюю челюсть резцы резцами с помощью резинок для достижения и поддержания максимального открытия рта. Осветите ротовую полость хирургической фарой.
  6. Аккуратно возьмите язык тканевыми щипцами и отведите его в сторону. Убедитесь, что язычок надёжно удерживается, чтобы обеспечить чистый и беспрепятственный обзор верхнечелюстных коренных зубов.

2. Процедура удаления зуба

  1. Продезинфицируйте место операции повидон-йодом. Разместите стоматологический эксплорер #5 на дистальной поверхности верхней челюстной первой моляра (межпроксимальное пространство между первым и вторым молярам) и приложите мезиодистальную силу для достижения начальной вывиха (рисунок 2A).
  2. Переместите эксплорер к мезиальной поверхности первого моляра и вновь примените мезиодистальную силу для дальнейшей мобилизации зуба (рисунок 2B).
  3. Поместите кончик исследователя в нёбную десневой борозду. Применяйте сочетание мягкого букко-нёбного вращательного движения и устойчивого окклюзионного давления вдоль длинной оси зуба. Продолжайте, пока зуб не будет полностью вывихнут из лунки (рисунок 2C,D).
  4. Тщательно осмотрите удалённый зуб под прямым взглядом, чтобы убедиться, что все корни целы и нет переломов. Аккуратно промыйте пустую лунку струей физиологического раствора из стерильного шприца, чтобы удалить остатки тромбов или мусоров (рисунок 2E,F).
  5. Достичь гемостаза, приложив стерильное давление ватной палочки в течение 1 минуты. Верните язык в анатомическое положение. Держите животное на грелке до полного восстановления после наркоза.
  6. Обеспечьте мягкое питание и питьевую воду с антибиотиками (амоксициллин 250 мг/кг) в течение одной недели.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Применяйте контролируемое, прогрессивное усилие во время вывиха и избегайте резких движений, чтобы предотвратить перелом корня или повреждение альвеолярной кости.

Рисунок 2
Рисунок 2: Процедура удаления зуба. В дистальные и проксимальные части верхнечелюстного первого моляра крысы был введён стоматологический зонд для освобождения пародонтальных связок (A,B). Небное применение вращательных и окклюзионных сил для вывиха зуба (C,D). Лунка была тщательно обследована на наличие остаточных корневых фрагментов (E). Показан целый первый верхний моляр крысы (F). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

3. Операция по установке имплантов

  1. Через восемь недель после удаления создайте мезиодистальный разрез диаметром 5 мм над отходящим гребнем стерильной лезвия 12c, проникая к поверхности кости (рисунок 3A).
  2. Используйте эксплорер #5 для тупой диссекции, чтобы поднять слизистые лоскуты полной толщины, обнажая место операции (рисунок 3B).
  3. Подключите сверло из карбида вольфрама (диаметром 1,5 мм) к ручному адаптеру отвёртки и выполните остеотомию ручным вращением по часовой стрелке с периодическим промыванием физиологическим раствором для термического контроля, подготовив место имплантата глубиной 4 мм внутри зажившей гнезда экстракции при сохранении непрерывной тактильной обратной связи для предотвращения перфорации коры (рисунок 3C).
  4. Вставьте специально изготовленный титановый имплант (диаметр 1,8 мм, длина 3,2 мм, обработанная поверхность) с использованием вращения по часовой стрелке. Проверьте устойчивость по отсутствию мобильности в приложении эксплорера (рисунок 3D-F).
  5. Дайте недельный период заживления с продолжением мягкого питания и антибиотиков, как было описано ранее.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте мягкую хирургическую технику и избегайте чрезмерного осевого давления, чтобы предотвратить иатрогенной перфорации верхнечелюстного синуса.

Рисунок 3
Рисунок 3: Процедура установки импланта. Мезиодистальный разрез был выполнен с помощью изогнутого лезвия No12 (A). Слизистый лоскут отражался зубным зондом (B). Остеотомия проводилась с использованием сверла из карбида вольфрама толщиной 1,5 мм, прикреплённой к ручной дрели (C). Имплант устанавливался в челюстную кость с помощью индивидуального переносчика импланта (D). После имплантации для проверки подвижности (E,F) использовался зонд (E,F). Индивидуальный титановый имплант (гладкая поверхностная резьба, диаметр 1,8 мм, длина 3,2 мм), соответствующий носитель импланта (G, H) и мини-ручное сверло (I). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

4. P. gingivalis — подготовка для лигированного шва

  1. Культура P. gingivalis анаэробно при 37 °C в бульоне с инфузией мозга (BHI) объемом 5 мл до достижения 109 CFU/mL (OD 600 =1,0).
  2. Передайте подвеску при разбавлении 1:20 на свежую среду BHI объемом 10 мл.
  3. Полностью погрузите стерильные швы из 3-0 шелка в инокуленную среду. Инкубировать анаэробно при 37 °C в течение 48-72 часов для формирования зрелой биоплёнки.

5. Индукция ПИ

  1. Через четыре недели после имплантации наложите шв, пропитанный P. gingivalis, вокруг шеи импланта с помощью стерильного держателя для иглы. Закрепите тройным узлом рядом с десневой тканью (рисунок 4A-D).
  2. Поддерживайте связку в течение 2 недель, контролируя прогрессирование воспалительных процессов.
  3. Проводите ежедневный осмотр лигатуры. Замените, если ослаблены или потеряны, с помощью асептической техники.
    ПРИМЕЧАНИЕ: При завязывании узлов аккуратно отделяйте мягкие ткани, чтобы избежать разрыва, и следите, чтобы шовный узел располагался под десневой стороной.

Рисунок 4
Рисунок 4: Процедура ПИ, индуцированная швами : подготовленная нить, пропитанная бактериями (3-0), была размещена в поддесневом положении на дистальном конце импланта (A). Первый узел был завязан и закреплён держателем для иглы для предотвращения вывиха узла (B). Затем завяжите тройной узел, чтобы предотвратить скольжение шва (C,D). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой фигуры.

6. Эвтаназия и сбор образцов

  1. После двухнедельного периода индукции эвтаназия животных через вывих шейки матки под глубоким изофлурановым наркозом (согласно утверждённым институциональными протоколами). Вскрыть целую верхнюю челюсть с помощью имплантов с помощью острых инструментов.
  2. Немедленно погружать образцы в 4% параформальдегид для фиксации за 24 часа. Удалите остатки мягких тканей с помощью PBS-орошения и храните в 70% этанола.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Эксперимент может быть приостановлен на этом этапе с длительным хранением в 70% этанола при 4 °C.

7. Микрокомпьютерная томография (микро-КТ) анализ

  1. Сканирование образцов с помощью микрокомпьютерной томографии согласно установленнойметодологии 24.
  2. Включите сканер и компьютер. Запустите программное обеспечение для приобретений. Нажмите на значок радиационной безопасности и дайте 15-минутную разминку.
  3. Откройте сканирующую камеру. Установьте образец в коническую трубку объёмом 15 мл, стабилизированную пеной низкой плотности, затем закрепите трубку на вращательной ступени и разместите её в камере сканирования.
  4. Инициировать рентгеновский источник (90 кВ, 80 мА). Нажмите на иконку предварительного просмотра , чтобы подтвердить оптимальное позиционирование. Задайте параметры: разрешение 12 мкм , экспозиция 20 Гц , всего 4000 кадров.
  5. Восстанавливать изображения с помощью программного обеспечения Recon 1.7.4.0.
  6. Проанализируйте следующие параметры кости в программном обеспечении Avatar 1.7.4.0, определив ROI в верхневерхней первой молярной области: долю объёма кости (BV/TV), соотношение поверхности кости к объёму кости (BS/BV), толщину трабекуляров (Tb.Th) и трабекулярное число (Tb.N).

8. Гистологическая обработка

  1. Декальцифицировать фиксированные образцы с 10% ЭДТА (pH 7,4) с изменениями раствора каждые 72 часа в течение 4 недель. Проверьте завершение с помощью теста на проникновение иглой.
  2. Сушить образцы через серию этанолов: 75% этанола 4 часа, 85% этанола 2 часа, 90% этанола 2 часа, 95% этанола 1 час и две смены 100% этанола по 30 минут каждая.
  3. Прозрачные образцы в ксилоле с двумя изменениями по 10 минут каждый. Инфильтруйте парафин, используя три изменения по 1 час каждая.
  4. Внедрить ткани в расплавленный парафин и остыть на стадии замерзания при -20 °C. Подрежьте блоки и храните при 4 °C в течение 10 часов перед секционированием.
  5. Сечение парафиновых блоков толщиной 5 мкм. Плавающие секции на водяной бане при температуре 45 °C и крепление на стеклянные стеклянные горки. Сухие слайды при 37 °C в течение 1 часа.
  6. Депарафинизируйте срезы с помощью двух смен ксилола по 5 минут каждая. Регидратировать с помощью серии градуированного этанола: 100% этанол в течение 5 минут, 90% этанол 5 минут, 80% этанол 5 минут и 70% этанол в течение 5 минут.
  7. Полосните участки в дистиллированной воде на 1 минуту. Покрасьте гематоксилином в течение 8 минут, затем прополосните в проточной воде из-под крана.
  8. Дифференцируйте кислотным спиртом 1% в течение 3 секунд. Прополосните проточную водопроводную воду для посинения. Нанесите контрокраску эозином в течение 5 минут.
  9. Дегидрировать через серию сортируемого этанола: 70% этанол на 10 с, 80% этанол на 10 с, 90% этанол за 10 с и 100% этанол на 10 с. Прочистите в двух сменах ксилола по 5 минут каждая.
  10. Закрепите покрытия с нейтральным бальзамом и осмотрите под световым микроскопом.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Ксилол опасен. Используйте в вытяжке с соответствующими СИЗ.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Все двенадцать 4-недельных крыс Спраг-Доули, участвовавших в исследовании, успешно прошли все хирургические процедуры и продемонстрировали стабильную остеоинтеграцию до лигирования, соответствуя заранее установленному критерию инклюзии выздоровления без осложнений. Из анализа не исключено животное. Крысы случайным образом распределяются в группу NC или PI (n = 6 на группу) с помощью генератора случайных чисел. Исследователи, проводящие количественную микро-КТ и гистопатологические оценки, остаются слепыми к групповым рас...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Настоящее исследование демонстрирует возможность индуцирования ПИ в модели крыс с использованием швов, пропитанных P. gingivalis, и предоставляет подробную документацию соответствующих хирургических процедур. Модели грызунов, особенно у крыс, хорошо признаны в стоматологических исследованиях для изучения пародонтита и ПИ благодаря их доступности, низким затратам на обслуживание и высокой репродуктивной эффективности, что подтверждается существующей литературой1...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы утверждают, что не существует потенциальных конфликтов интересов, которые могли бы повлиять на работу, описанную в этой статье.

Благодарности

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа поддерживается грантами Сычуаньской медицинской ассоциации (грант No S2024052); Бюро науки и технологий Лучжоу (грант No 2024JYJ070) и аффилированной стоматологической больницы Юго-Западного медицинского университета (грант No 2025DS03). Авторы также с благодарностью выражают признательность за техническую помощь, оказанную Центром экспериментов с животными Юго-Западного медицинского университета. Научная диаграмма создаётся с помощью BioRender.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
#5 Dental ExplorerZhengzhou Kangdetai Medical Co., Ltd., Чжэнчжоу, CN6970327120856Вывих зубов и удаление
1% кислотного спиртаSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd, Шанхай, Канада10000018 (Этанол) и 10000118 (HCL)Дифференциация гематоксилина
10% ЭДТА (pH 7,4)Servicebio Technology Co., Ltd, Ухань, КанадаG1105Декальцификация костей
100% раствор этанолаMacklin Biochemical Technology Co., Ltd., Шанхай, КитайE708068Полное обезвоживание и подготовка растворителя
Лезвие 12C и хирургический скальпельTianda Medical Co., Ltd., Хуаян, Канада6951933811154Создание мукопериостального лоскута
Шёлковые лигатуры 3-0Jinhuan Medical, Шанхай, CNNC9201232Лигатура
4% параформальдегидBiosharp, Hefei, CNBL539AФиксация тканей
70% этанолЛабораторная подготовка-Хранение образцов
75% раствор этанолаMacklin Biochemical Technology Co., Ltd., Шанхай, КитайE885996Дезинфекция поверхности и начальное обезвоживание
Амоксициллин 50 и мю; g/mLNorth China Pharmaceutical Co., Ltd, Шицзячжуан, CNH13020635Антибиотики в питьевой воде
Программное обеспечение для аватараAvatar Integrated Systems Inc, Мюнхен, Делавер-Анализ параметров костей
Среда BHICrown Lab Supplies Inc, Британская Колумбия, Калифорния110052Культура P. gingivalis
CT-VoxelBruker Corporation, Биллерика, Массачусетс, США-Визуализация изображений с помощью микро-КТ
ЭозинBeijing Solarbio Science & Science Technology Co., Ltd, Пекин, CN
G1100		Цитоплазматическое окрашивание
Серия этанолов (80%, 90%, 95%)Лабораторная подготовкаПостепенное обезвоживание/регидратация тканей
GraphPad PrismGraphPad Software, Inc., Сан-Диего, Калифорния, СШАВерсия 9.0.0Статистический анализ и генерация графов
ФараShenzhen Supfire Lighting Co., Ltd, Шэньчжэнь, CNHL23-XВнутриротовое освещение
ГематоксилинBeijing Solarbio Science & Science Technology Co., Ltd, Пекин, CNH8070Ядерное окрашивание
Носитель имплантаSichuan Weisida Medical Device Co., Ltd, Сычуань, КанадаУникальный продуктРучная установка импланта
ИзофлуранRWD Life Science Co., Ltd, Шэньчжэнь, КанадаR510-22-10 Поддержание ингаляционной анестезии
Ручной адаптер отвёрткиDiqin Decorative Materials Co., Ltd, Ханчжоу, CNDQ-80013Остеотомия
Медицинские ватные палочкиKekang Pharmaceutical Co., Ltd, Сучжоу, КанадаHN-02Гемостаз
Микро-КТ-сканерServicebio Technology Co., Ltd, Ухань, КанадаVNC-102μ КТ-сканы
Держатель для иглыShanghai Medical Instruments Co., Ltd, Шанхай, CNJ32110Швовое перевязывание
Нейтральный бальзамBeijing Solarbio Science & Science Technology Co., Ltd.
Пекин, CN		G8590Монтаж гистологических секций
Офтальмологические щипцыSolingmed Technology Co., Ltd, Шэньчжэнь, КанадаSS-5002Размещение лигатуры
ПарафинAmin Noori General Trading LLC, Дубай, AE8012-95-1Вложение ткани
PBSProcell Life Science & Technology Co., Ltd, Ухань, КанадаPB180327Ирригация тканей
Porphyromonas gingivalisЭквивалент-Индукция воспаления
ПовидонйодChengdu Yong'an Pharmaceutical Co., Ltd, Чэнду, CNH51023539Дезинфекция
Программное обеспечение для разведкиRecon Technology Ltd, Каймановые острова, ВеликобританияВерсия 1.7.4.0Реконструкция микро-КТ-изображения
Резиновая лентаКомпания Zhejiang Yueyi Rubber Products Co., Ltd, Тайчжоу, CNVYR43*1.4Тяга челюсти и фиксация
SD RatsЭкспериментальный центр животных Юго-Западного медицинского университета, Лучжоу, CNSCXK(Chuan)2024-0046Хирургические процедуры
Острые хирургические ножницыHunan Cofoe Medical Technology Co., Ltd., Чанша, Канада1.0806E+13Резка нитей
Тканевые щипцыFine Science Tools, Фостер-Сити, Калифорния, США11000-12Тяга и фиксация языка
Титановые импланты (и Ослэш; 1,8 раза; 3,2 мм)Sichuan Weisida Medical Device Co., Ltd, Сычуань, КанадаУникальный продуктТитановый имплант
Триброметанол (Авертин)Хэнань Сайхоу Биотехнология Лтд., Чжэнчжоу, CN-Внутрибрюшинная анестезия
КсилолSinopharm Chemical Reagent Co., Ltd, Шанхай, Канада10023418Очищение тканей и удаление воска

Ссылки

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Gupta, R., Gupta, N., Weber, D. K. Dental implants. , StatPearls Publishing LLC. Treasure Island (FL). Copyright 2025 (2025).
  2. Lee, C. T., Huang, Y. W., Zhu, L., Weltman, R. Prevalences of peri-implantitis and peri-implant mucositis: Systematic review andmeta-analysis. J Dent. 62, 1-12 (2017).
  3. Berglundh, T., et al. Peri-implant diseases and conditions: Consensus report of workgroup 4 of the 2017 world workshop on the classification of periodontal and peri-implant diseases and conditions. J Clin Periodontol. 45 (Suppl 20), S286-S291 (2018).
  4. Schwarz, F., Derks, J., Monje, A., Wang, H. L. Peri-implantitis. J Clin Periodontol. 45 (Suppl 20), S246-S266 (2018).
  5. Diaz, P., Gonzalo, E., Villagra, L. J. G., Miegimolle, B., Suarez, M. J. What is the prevalence of peri-implantitis? A systematic review and meta-analysis. BMC Oral Health. 22 (1), 449(2022).
  6. Herrera, D., et al. Prevention and treatment of peri-implant the EFP S3 level clinical practice guideline. J Clin Periodontol. 50 (Suppl 26), 4-76 (2023).
  7. Fu, J. H., Wang, H. L. Breaking the wave of peri-implantitis. Periodontol. 84 (1), 145-160 (2020).
  8. Sant'anna, H. R., et al. Peri-implant repair using a modified implant macrogeometry in diabetic rats: Biomechanical and molecular analyses of bone-related markers. Materials (Basel). 15 (6), 2317(2022).
  9. Ribitsch, I., et al. Large animal models in regenerative medicine and tissue engineering: To do or not to do. Front Bioeng Biotechnol. 8, 972(2020).
  10. He, Q., et al. Development of a rat model for type 2 diabetes mellitus peri-implantitis: A preliminary study. Oral Dis. 28 (7), 1936-1946 (2022).
  11. DeAraújo Silva, D. N., et al. Experimental model of ligature-induced peri-implantitis in mice. J Vis Exp. (207), e66316(2024).
  12. Chadwick, J. W., Glogauer, M. Robust ligature-induced model of murine periodontitis for the evaluation of oral neutrophils. J Vis Exp. (155), e59667(2020).
  13. Kantarci, A., Hasturk, H., Van Dyke, T. E. Animal models for periodontal regeneration and peri-implant responses. Periodontol. 68 (1), 66-82 (2000).
  14. Varon-Shahar, E., et al. Peri-implant alveolar bone resorption in an innovative peri-implantitis murine model: Effect of implant surface and onset of infection. Clin Implant Dent Relat Res. 21 (4), 723-733 (2019).
  15. Hiyari, S., et al. Ligature-induced peri-implantitis and periodontitis in mice. J Clin Periodontol. 45 (1), 89-99 (2018).
  16. Tzach-Nahman, R., Mizraji, G., Shapira, L., Nussbaum, G., Wilensky, A. Oral infection with Porphyromonas gingivalis induces peri-implantitis in a murine model: Evaluation of bone loss and the local inflammatory response. J Clin Periodontol. 44 (7), 739-748 (2017).
  17. Pirih, F. Q., et al. Ligature-induced peri-implantitis in mice. J Periodontal Res. 50 (4), 519-524 (2015).
  18. Pirih, F. Q., et al. A murine model of lipopolysaccharide-induced peri-implant mucositis and peri-implantitis. J Oral Implantol. 41 (5), e158-e164 (2015).
  19. Reinedahl, D., Chrcanovic, B., Albrektsson, T., Tengvall, P., Wennerberg, A. Ligature-induced experimental peri-implantitis-a systematic review. J Clin Med. 7 (12), 492(2018).
  20. Gao, L., Yu, X. Q., Cai, Y. Effect of molar ligation and local Porphyromonas gingivalis inoculation on alveolar bone loss in the mouse. Beijing Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 49 (1), 31-35 (2017).
  21. Wongtim, K., et al. Overexpression of PD-L1 in gingival basal keratinocytes reduces periodontal inflammation in a ligature-induced periodontitis model. J Periodontol. 93 (1), 146-155 (2022).
  22. Koutouzis, T., Eastman, C., Chukkapalli, S., Larjava, H., Kesavalu, L. A novel rat model of polymicrobial peri-implantitis: A preliminary study. J Periodontol. 88 (2), e32-e41 (2017).
  23. Veríssimo, L. F., et al. Cardiovascular effects of early maternal separation and escitalopram treatment in rats with depressive-like behaviour. Auton Neurosci. 256, 103223(2024).
  24. Kim, Y., Brodt, M. D., Tang, S. Y., Silva, M. J. MicroCT for scanning and analysis of mouse bones. Methods Mol Biol. 2230, 169-198 (2021).
  25. Kuraji, R., Hashimoto, S., Ito, H., Sunada, K., Numabe, Y. Development and use of a mouth gag for oral experiments in rats. Arch Oral Biol. 98, 68-74 (2019).
  26. Lu, S., et al. Effect of ovariectomy on tissue-level changes in rat maxilla. Int J Oral Maxillofac Implants. 34 (4), 865-872 (2019).
  27. Heitzer, M., et al. Establishing a new periodontitis-like intrabony maxillary defect in rats for investigation on bone regeneration. Sci Rep. 15 (1), 39358(2025).
  28. Moiseev, D., et al. A new way to model periodontitis in laboratory animals. Dent J (Basel). 11 (9), 219(2023).
  29. Marchesan, J., et al. An experimental murine model to study periodontitis. Nat Protoc. 13 (10), 2247-2267 (2018).
  30. Nasution, D. L. I., Tjahajawati, S., Indriyanti, R., Amaliya, Anti-inflammatory effectiveness of Peperomia pellucida (l.) kunth in rats induced with periodontitis. Biochem Biophys Rep. 40, 101856(2024).
  31. Meng, L. W., et al. Comparison of three methods for establishing rat peri-implantitis model. Beijing Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 55 (1), 22-29 (2023).
  32. Zhang, H., et al. Application of immediate implant placement techniques in peri-implantitis modeling. J Craniofac Surg. 34 (8), 2544-2550 (2023).
  33. Ortiz-Sánchez, B. J., Juárez Avelar, I., Rodriguez-Sosa, M. Murine model of advanced periodontitis induced by nylon ligature in the second upper molar. J Vis Exp. (219), e67848(2025).
  34. Lafaurie, G. I., et al. Microbiome and microbial biofilm profiles of peri-implantitis: A systematic review. J Periodontol. 88 (10), 1066-1089 (2017).
  35. Zhang, Q., Liu, J., Ma, L., Bai, N., Xu, H. Lox-1 is involved in TLR2-induced RANKL regulation in peri-implantitis. Int Immunopharmacol. 77, 105956(2019).
  36. Qiao, S., et al. Oral microbial profile variation during canine ligature-induced peri-implantitis development. BMC Microbiol. 20 (1), 293(2020).
  37. De Avila, E. D., Van Oirschot, B. A., Van Den Beucken, J. Biomaterial-based possibilities for managing peri-implantitis. J Periodontal Res. 55 (2), 165-173 (2020).
  38. Iizumi, T., et al. Effect of antibiotic pre-treatment and pathogen challenge on the intestinal microbiota in mice. Gut Pathog. 8, 60(2016).
  39. Heitz-Mayfield, L. J. A., Salvi, G. E. Peri-implant mucositis. J Clin Periodontol. 45 ((Suppl 20)), S237-S245 (2018).
  40. Javed, F., Romanos, G. E. Efficacy of photobiomodulation in the management of experimentally-induced peri-implant osseous defects: An evidence-based review of studies on animal models. J Dent. 159, 105833(2025).
  41. Yu, S., et al. Adjunctive diode laser therapy and probiotic lactobacillus therapy in the treatment of periodontitis and peri-implant disease. J Vis Exp. (183), e63893(2022).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Видео скоро будет доступно

Похожие статьи