$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Пятьдесят специфических самцов крыс рода Sprague-Dawley весом 180–200 г, свободных от патогенов (SPF), были поставлены Провинциальным центром контроля и профилактики заболеваний провинции Хубэй (Хубэйская провинциальная академия профилактической медицины) (Ухань, Китай; Сертификат о правах на животных No SCXK(JB) 2023-0005). Все экспериментальные процедуры с участием животных проводились в строгом соответствии с Руководством Национального института здоровья по уходу и использованию лабораторных животных (8-е издание, 2011). Протокол исследования был пересмотрен и утверждён Комитетом по этике экспериментальных животных компании Tianjin Genink Biological Technology Co., Ltd. (Одобрение No GENINK-20250074). Ключевые реагенты и оборудование, использованные в этом исследовании, перечислены в прилагаемой таблице материалов.
Клеточная культура
Клеточная линия человеческого ревматоидного артрита (РА) MH7A была культивирована в среде Modified Eagle Medium (DMEM) компании Dulbecco, дополненная 10% (v/v) сывороткой плода (FBS) и поддержана при 37 °C в увлажнённом инкубаторе с 5% CO₂17.
Животные и лечение
Животных содержали в стандартном специализированном помещении без патогенов (SPF) с системой индивидуально вентилируемой клетки (IVC) при строго контролируемых условиях: климат-контролируемая температура 21,0–25,0 °C, относительная влажность 40–70%, фотопериод продолжительностью 12 часов и полное обновление воздуха 15 раз в час. После 7-дневного периода акклиматизации крыс случайным образом делили на шесть экспериментальных групп, при этом дополнительные крысы были резервными для непредвиденных обстоятельств. Модель острого воспалительного адъювантного артрита (AA) была индуцирована подкожной инъекцией 100 мкл полного адъюванта Фройнда (CFA; 10 мг·мл-1) в правую заднююлапу 18. Экспериментальные группы были спроектированы следующим образом: пустая контрольная группа, группа модели AA, положительная контрольная группа (метотрексат, 0,9 мг·кг-1)19 и три группы для лечения смирнотином А, применяемые в низких (0,962 мг·кг-1), средних (1,923 мг·кг-1) и высоких дозах (3,846 мг·кг-1) на основе значения IC₅₀.
Прогнозирование заболеваний и составных мишень
На основе предварительного скрининга активности, проведённого нашей исследовательской группой, для исследования были отобраны шесть соединений, демонстрирующих благоприятную биоактивность: пять дитерпеноидных алкалоидов (рисунок 3), бензоилаконин (1), 14-бензоил-8-O-метилаконин (2), (−)-(A-b)-14α-бензоилокси-N-этил-13β, 15α-дигидрокси-1α, 6α, 8β, 16β, 18-пентаметоксиаконитан (3), смирнотин A (4) и аконитин (5), а также один производный кумарина — скополетин (6)20. Упрощённые молекулярно-входные системы ввода строк (SMILES) для этих соединений были получены из базы данных PubChem (https://pubchem.ncbi.nlm. nih.gov/) или сгенерированы с помощью ChemDraw 18.0. Эти обозначения впоследствии были импортированы в базу данных SwissTargetPrediction (https://swisstargetprediction.ch/), где вид был указан как «Homo sapiens». Потенциальные мишени были выявлены путём отбора генов с вероятностным значением > 0, а соответствующие Target Names и UniProt ID былисобраны 21,22.
Сети PPI
Перекрывающиеся целевые гены анализировались сетью взаимодействия белков и белков (PPI) с использованием базы данных STRING (https://string-db.org/)23. Полученные данные в формате TSV затем импортировались в Cytoscape 3.9.1 для дальнейшей визуализации и анализа. Топологические параметры сети вычислялись с помощью встроенного плагина Network Analyzer . В визуализированной сети размер узла и интенсивность цвета отображались по степени, а толщина краёв отражала силу взаимодействия между целями. Основные цели были определены и ранжированы на основе их степениассоциации 24.
Анализ путей обогащения генной онтологии (GO) и Киотской энциклопедии генов и геномов (KEGG)
Общие мишени были представлены в базу данных Metascape (https://metascape.org) для анализа обогащения путей GOи KEGG 25. Функциональные результаты визуализировались с помощью платформы биоинформатики WeiShengXin (https://www.bioinformatics.com.cn).
Построение сети «путей лекарственно-активных компонентов-болезней-мишеней»
Активные компоненты и соответствующие им цели систематически проверялись, а затем проводился функциональный анализ обогащения для выявления основных сигнальных путей и связанных с ними целей. Эти элементы были впоследствии интегрированы с помощью Cytoscape 3.9.1 для создания комплексной сети «активные компоненты лекарств — болезни — цели — пути». Затем с помощью инструмента Network Analyzer проводился топологический анализ, в котором узлы ранжировались по ключевым параметрам, включая степень и промежуточность, чтобы определить центральные элементы сети.
Молекулярное стыковывание ключевых соединений с основными мишенями
Трёхмерные структуры основных белков-мишеней, включая ESR1 (9BQE), PTGS2 (5F19), EGFR (2XKN), GSK3B (5HLN), SRC (5MTJ) и ERBB2 (8U8X), были извлечены из RCSB Protein Data Bank (http://www.rcsb.org/; доступ 7 мая 2025 года). Составные структуры были созданы в ChemDraw (версия 18.0) и впоследствии преобразованы в трёхмерный SDF-формат с использованием интегрированного модуля Chem3D. Результаты молекулярного стыковки визуализировались с помощью PyMOL, а аффинности связывания оценивались по энергии взаимодействия (ккал·моль-1)26.
Анализ жизнеспособности клеток
Клетки MH7A в логарифмической фазе роста были засеяны в пластины с 96 лунками при плотности 5 × 103 клеток на колодцу. Достигнув слияния 80%, клетки сначала обрабатывали липополисахаридом (LPS) (1 мкг·мл-1) в течение 6 часов, а затем подвергали воздействию различных концентраций смирнотина A (5, 25, 50, 75 и 100 мкг·мл-1). Каждая группа обработки была собрана в четырёхкратных и инкубирована в течение 24 часов при 37 °C при 5% CO₂. После инкубации в каждую скважину добавляли 100 мкл 10% раствора CCK8, после чего следовала дополнительная инкубация при 37 °C в течение 2 часов. Поглощение при 450 нм измерялось с помощью считывателя микропластин.
Анализ ELISA в клетках MH7A
Супернатант был собран центрифугированием при 2000 × г в течение 20 минут при 4 °C. Уровни воспалительных цитокинов, включая IL-6, IL-1β, TNF-α и IL-10, были количественно измерены в супернатанте с помощью соответствующих наборов ELISA, строго в соответствии с инструкциями производителя.
Измерение степени отёка пальцев ног
Степень отёка правой задней лапы оценивалась путём измерения её объёма каждые 3 дня после моделирования. Измерения проводились дважды на крысу и усреднялись. Воспалительная реакция количественно определялась как процентное увеличение объёма лапы относительно исходного уровня.

Измерение индекса органов
Все крысы были анестезиированы и усыплены через 24 часа после окончательного введения. Применяется гуманный метод, признанный международным ветеринарным сообществом. Во-первых, для глубокой анестезии животного используется высокая концентрация (5%) изофлурана. Когда оно теряет сознание и все рефлексы, грудная клетка открывается, а сердце разрезано, что гарантирует, что животное умирает безболезненно и без ощущений. Селезёнка и тимус были быстро вырезаны и взвешены. После промывания обычным физиологическим раствором избыточная влага с поверхности тканей удалялась промоканием фильтрующей бумагой, и влажность органов былазафиксирована как 27,28.

Гематоксилин и эозин (HE)
Для сохранения целостности образцов ткани лапы была собрана и хранена вся часть, дистальная от правого лодыжкового сустава каждой крысы. Для сечения использовалась опухшая ткань лапы. Процедура взятия образцов была следующей: ткань примерно в 1 см выше правого голеностопного сустава была полностью рассечена, мех удален, а костный ствол разрезан на проксимальном конце. Образец был немедленно зафиксирован в растворе параформальдегидов 10%. После фиксации ткань помещали в 15% раствор декальцификации ЭДТА. Декальцификация контролировалась каждые 3 дня, а раствор обновлялся по мере необходимости до размягчения ткани, что означало завершение декальцификации. Ткань затем обезвоживалась с помощью серии градуированного этанола (75% 4 часа, 85% 2 часа, 90% 1,5 часа, 95% 1 час и две смены 100% этанола на 0,5 часа). Участки были депарафинированы, увлажнены через этанол, окрашены гематоксилином в течение 10 минут, промыты водопроводной водой, дифференцированы в соляной кислоте — этанол в течение 10 секунд, промыты водопроводной водой, посиняли, снова промыты, погружены в 85% этанол на 5 минут, окрашены эозином в течение 5 минут, промыты водопроводной водой 3 секунды, обезвожены, очищены и установлены для наблюдения29 минут.
Анализ ИФА в крысиной сыворотке
Образцы крови были центрифугированы при 2000 × г в течение 20 минут при 4 °C, а полученный супернатант был собран для анализа цитокином. Концентрации IL-1β, IL-6 и TNF-α были определены с помощью коммерческих комплектов ELISA, строго в соответствии с протоколами производителя. Стандартная кривая была сгенерирована и подгонена с помощью программного обеспечения cvxpt32, а уровни выражения каждого цитокина вычислялись путём интерполяции значений поглощения в соответствующее стандартное уравнение кривой. Итоговые концентрации белков рассчитывались на основе фактических экспериментальных измерений.
Количественный полимеразный анализ цепной реакции (qPCR)
Общая РНК была выделена из синовиальных клеток с помощью реагента TRIzol, при этом фазовое разделение достигнуто добавлениемхлороформ 30. Затем был использован коммерческий комплект для обратной транскрипции для синтеза кДНК из изолированной РНК, строго следуя инструкциям производителя. qRT-PCR проводилась с использованием реагента SYBR Premix. В качестве эндогенного эталонного гена использовалась глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназа (GAPDH), а относительные уровни экспрессии генов рассчитывались методом 2-ΔΔCt . Использовались следующие последовательности праймеров: GAPDH Вперёд: ACAGCAACAGGGTGGTGGAC и GAPDH Обратно: TTTGAGGGTGCAGCGAACTT; IL-17A Вперед: CTGATGCTGTTGCTGCTACTGA, и IL-17A Обратная сторона: TGGAACGGTTGAGGTAGTCTGA; TRAF6 Вперёд: ACATTTCCCTCTTTGTCCACAC, и TRAF6 Назад: TTAGCATCCATGACCTCTTCGT; IL-10 Вперед: CTGCAGGACTTTAAGGGTTACTT, и IL-10 Задняя часть: CTTGCTTTTTTTATTCACAGGGGA; IL-1β Вперёд: CCTGTGTGATGAAAGAGGGC, и IL-1β Обратная: TATGTCCCGACCACCATTGCTGT; IL-6 Вперед: GTTGCCTTCTTGGGACTGGG, а IL-6 Задняя часть: TACTGGTCTGTGTGTGGGGGTGT.
Экстракция белка и вестерн-блоттинг
Синовиальная ткань была лизирована в буфере радиоиммунопреципитационного анализа (RIPA), дополненном фосфатазой/ингибиторами протеаз, а концентрации белков измерялись с помощью набора для анализа на бицинхониновую кислоту (BCA). Для вестерн-блоттинга лизаты, содержащие равные количества белка, подвергались электрофорезу гель-натрия додецилсульфат-полиакриламид (SDS-PAGE) и затем переносились на мембраны поливинилиденфторида (PVDF). После блокировки 5% обезжиренным молоком в Tris-буферном физиологическом растворе с 0,1% Tween (TBST) в течение 2 часов при 25 °C, мембраны инкубировали ночью при 4 °C с первичными антителами (GAPDH 1:50000; P-PI3K 1:1000; PI3K 1:1000; P-AKT 1:3000; AKT 1:6000). После обширной промывки TBST мембраны были прореагированы вторичными антителами, конъюгированными пероксидазой хрена (HRP) (Anti-Mouse IgG 1:10000; Антикроликовый IgG 1:1000) в течение 2 часов при комнатной температуре. После очередной серии TBST-промывок белковые полоски визуализировались с использованием усиленного хемилюминесцентного (ECL) субстрата. Интенсивность полос измерялась с помощью программного обеспечения ImageJ и нормализовывалась до GAPDH в качестве управления нагрузкой.
Статистический анализ
Все данные были проанализированы с помощью программного обеспечения Graphpad Prism 9.5 и представлены как среднее ±± стандартное отклонение. Статистические сравнения проводились с использованием одностороннего ANOVA, где это было уместно. p-значение менее 0,05 считалось статистически значимым. По сравнению с контрольной группой: *p < 0,05, **p < 0,01, p < 0,001, и p < 0,0001; По сравнению с группой Model/LPS: #p < 0,05, ##p < 0,01, ###p < 0,001, и ####p < 0,0001.