$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Адоптивный перенос клеток — это метод введения в организм интересующих клеток. Это мощный метод для изучения различных биологических механизмов, включая действие определенных классов иммунных клеток. Кроме того, адоптивный перенос является многообещающим новым методом лечения многочисленных заболеваний, таких как те, которые требуют трансплантации костного мозга или лечения рака, при котором собственные Т-клетки пациента могут быть извлечены, изменены для распознавания и уничтожения раковых клеток, а затем возвращены в организм для борьбы с опухолями.
В лабораторных условиях животные модели часто используются для изучения адоптивного переноса. Например, у мышей с нокаутом CD45.1 Rag gamma-c отсутствуют фундаментальные рецепторы для многих цитокинов, которые необходимы для нормальной дифференцировки гемопоэтических стволовых клеток в лимфоциты. В результате, у нокаутных мышей нарушено развитие лимфоцитов и нет естественных киллеров, или NK-клеток, Т-клеток или В-клеток.
Адоптивный перенос может быть использован для введения недостающих иммунных клеток в этих скомпрометированных мышей путем сбора донорской мышиной ткани, содержащей высокие концентрации иммунных клеток, таких как селезенка. Затем ткань диссоциируется и выделяются различные клетки селезенки, включая иммунные клетки. Затем нежелательные эритроциты, или эритроциты, могут быть лизированы путем добавления буфера для лизинга хлорида калия аммония, а оставшиеся лейкоциты, или спленоциты, затем отделяются от клеточного мусора с помощью центрифугирования.
Наконец, очищенные спленоциты вводят мышам с ослабленным иммунитетом, что способствует детальному изучению функций этих клеток. Через несколько дней успех переноса адоптивных иммунных клеток может быть подтвержден путем выделения и подготовки спленоцитов хозяина таким же образом, как и донорской ткани. Затем эти клетки окрашиваются с использованием меченых антител против маркеров иммунных клеток донора, чтобы их можно было проверить и отсортировать с помощью FACS.
Для начала наденьте лабораторные перчатки и соответствующие средства защиты. Затем вымойте щипцы и ножницы для препарирования сначала моющим средством, а затем 70% этанолом, а затем высушите их чистым бумажным полотенцем. Приготовьте 50 миллилитров сбалансированного солевого раствора Хэнка, или HBSS, с 2% фетальной сывороткой для телят, или FCS, смешав один миллилитр FCS с 49 миллилитрами HBSS в 50-миллилитровой пробирке. Перемешайте, аккуратно пипетируя раствор вверх и вниз примерно 10 раз.
Вскрытие усыпленной мыши и удаление селезенки, как показано в видеопротоколе JoVE FACS для разделения В-лимфоцитов селезенки. Чтобы изолировать иммунные клетки, сначала поместите селезенку на клеточный фильтр 40 микрометров в чашке Петри. Раздавите селезенку поршнем, чтобы диссоциировать ее в блюде. Восстановите прилипшие клетки, промыв поршень и ситечко 1 миллилитром HBSS 2% FCS. Затем пипеткой диссоциированную селезенку и жидкость из чашки Петри поместите в центрифужную пробирку объемом 50 миллилитров. Вымойте чашку Петри с 5 миллилитрами HBSS 2% FCS и перелейте жидкость в 15-миллилитровую трубку.
Центрифугируйте пробирку при 370 умноженных на g в течение семи минут при 10 градусах Цельсия, а затем осторожно извлекайте пробирку, чтобы не потревожить гранулу. Теперь удалите надосадочную жидкость, не потревожив гранулы, и выбросьте жидкость в соответствующий контейнер для отходов. Затем добавьте два миллилитра буфера для лизинга хлорида калия в центрифужную пробирку и пипеткой вверх и вниз, чтобы повторно суспендировать гранулу и лизировать эритроциты. Подождите две минуты, а затем добавьте HBSS 2% FCS в ресуспендированную гранулу до получения общего значения 14 миллилитров. Повторите центрифугирование. Осторожно извлеките трубку и выбросьте надосадочную жидкость. Затем повторно суспендируйте гранулу в 5 миллилитрах HBSS 2% FCS путем пипетирования вверх и вниз. Далее подсчитайте клетки в суспензии. Добавьте пять микролитров трипанового синего к пяти микролитрам клеточной суспензии и хорошо перемешайте с помощью пипетирования. Затем аккуратно нанесите каплю разбавленной клеточной суспензии объемом пять микролитров между покровным стеклом и предметным стеклом Malassez. Установив микроскоп на 40-кратное увеличение, подсчитайте количество ячеек. Отрегулируйте концентрацию клеток от 10 до семи клеток на миллилитр, добавив соответствующий объем HBSS 2% FCS.
Чтобы начать адоптивный перенос, перенесите два миллилитра клеточной суспензии в пятимиллилитровую пробирку для сбора. Центрифугируйте пробирку при 370 умноженных на g в течение семи минут при 10 градусах Цельсия, а затем выбросьте надосадочную жидкость. Затем повторно суспендируйте гранулу в двух миллилитрах фосфатного буферного раствора и центрифугируйте пробирку при 370 умноженных на г в течение семи минут при 10 градусах Цельсия. Выбросьте надосадочную жидкость. Затем повторно суспендируйте гранулу в 200 микролитрах фосфатного буферного раствора. С помощью шприца объемом 0,5 миллилитра с иглой 29-го калибра введите 200 микролитров клеточной суспензии экспериментальной мыши внутривенно в ретроорбитальный кровеносный синус.
Через четыре дня после усыновления усыпьте мышей и удалите селезенку. Затем соберите иммунные клетки, как описано в третьем разделе. Затем перенесите по 100 микролитров клеточной суспензии от каждой мыши в две пробирки FACS, помеченные как контрольные и перенесенные. Центрифугируйте пробирки при 370 умноженных на g в течение семи минут при 10 градусах Цельсия, а затем выбросьте надосадочную жидкость. Теперь приготовьте смесь, содержащую четыре антитела при разведении, указанном в таблице 1. Добавьте по 100 микролитров смеси в каждую пробирку, а затем выдержите 20 минут на льду в темноте. Затем добавьте по одному миллилитру HBSS 2% FCS в каждую пробирку, а затем центрифугируйте пробирки при 370 умноженных на g в течение трех минут при 10 градусах Цельсия. Выбросьте надосадочную жидкость, а затем повторно суспендируйте гранулы в 200 микролитрах HBSS 2% FCS. Перенесите ресуспендированные элементы в новые меченые пробирки FACS. Теперь используйте проточную цитометрию, как показано в протоколе FACS, для оценки наличия CD45. 2 положительных лимфоцита.
Теперь мы определим наличие лимфоцитов CD45.2, которые были выделены из CD45. 1 селезенка хозяина. Для начала дважды щелкните значок FlowJo и перетащите файлы для каждой трубки в окне всех образцов. Затем дважды щелкните по переданному файлу, чтобы отобразить ячейки, записанные из этого образца, на точечной диаграмме, которая отображает прямое рассеяние FSCA по оси x и боковое рассеяние SSCA по оси y. Нажмите на многоугольник, чтобы обвести популяции лимфоцитов. Появится новое окно идентификации субпопуляции. Нажмите OK. Теперь установите ось Y в положение FSC-W, а ось X в положение FSC-A. Выберите популяцию одной ячейки с помощью инструмента полигона, как показано ранее.
Затем дважды щелкните по обведенной популяции, чтобы создать новое окно для выбранных ячеек. В новом окне выберите CD45.2 на Y и CD45.1 на X. Нажмите на значок T и настройте ось, чтобы увеличить график. Затем нажмите на многоугольник, чтобы обвести положительные клетки CD45.2. В окне идентификации субпопуляции назовите переданные ячейки популяции клеток и нажмите OK. В этом же окне нажмите на прямоугольник, чтобы выбрать отрицательные ячейки CD45.2. В окне идентификации субпопуляции назовите клетки-хозяева популяции клеток и нажмите OK. Далее дважды кликните по обведенному CD45.2 населению, перенесенному населению, чтобы создать новое окно для выбранных ячеек. В новом окне выберите CD3 на Y и CD4 на X.
Затем нажмите на многоугольник, чтобы обвести CD4 положительные клетки CD3. В этом окне идентификации субпопуляции назовите ваши переносимые популяцией клеток CD4. Затем повторите предыдущие шаги анализа с файлом управляющей мыши. Наконец, чтобы визуализировать популяции клеток, нажмите «Редактор макетов». Перетащите перенесенные ячейки и популяцию перенесенных CD4 клеток из переданных и управляющих файлов на вкладку Редактор макетов. Появится точечная диаграмма, представляющая CD45.2-положительные клетки и CD4-лимфоциты. СД45. 2 Перенесенные ячейки должны отображаться только на перенесенной точечной диаграмме мыши.
