Разработать 5'-специфичный праймер для интересующего гена (ген-специфичный праймер 1, GSP-1). Он должен быть очень специфичным, так как это единственный учебник, который вносит специфичность. Следовательно, относительно длинный праймер был бы предпочтительным (типичная длина около 24 нуклеотидов, Tm в диапазоне 55-65°C).
Проектируем второй, вложенный грунтовку (ГСП-2), т.е. грунтовка должна располагаться на расстоянии 3' от ГСП-1. Этот шаг является необязательным, но проведение второй ПЦР с вложенным праймером повысит выход и специфичность ПЦР для интересующего гена. Праймеры, используемые для амплификации кДНК dSmad2, перечислены в таблице 2.
2. Синтез кДНК
Извлеките РНК из образцов с помощью метода экстракции РНК или набора в соответствии с протоколом производителя. Обработайте образцы ДНКазой, чтобы избежать амплификации геномной ДНК. В нашем примере мы извлекли РНК из 10 целых взрослых мух.
Измерьте концентрацию РНК с помощью микрообъемного спектрофотометра и при необходимости отрегулируйте с помощью воды, не содержащей РНКазы, максимум до 100 нг/мкл.
Приготовьте кДНК в реакции обратной транскрипции (ОТ) с помощью набора, рекомендованного для RACE. Приготовьте мастер-смесь со следующими реагентами на образец:
- 4 мкл буфера для обратной транскрипции (5x)
- 2 мкл праймера Oligo(dT)20 (олиго, состоящий из 20 дезокситимидинов)
- 10 мкл РНК (макс. 1 мкг)
- 3 мкл ddH2O
- 1 мкл обратной транскриптазы - ИТОГО: 20 мкл
Инкубируйте реакцию в течение 90 минут при 42ºC. Включите отрицательный контроль, исключающий обратную транскриптазу.
Инактивируйте обратную транскриптазу путем инкубации при 85ºC в течение 5 мин.
Чтобы разбавить уровни ДНК для эффективной ПЦР, добавьте 80 μл TE-буфера, чтобы довести общий объем до 100 μl.
3. Амплификация фрагментов кДНК
Приготовьте смесь для ПЦР с амплификацией первого раунда с использованием высокоточной (HF) Taq-полимеразы:
- 4 мкл 5x HF Taq полимеразный буфер
- 0,4 мкл смеси dNTP (по 10 мМ каждая)
- 1 мкл праймера GSP1 (10 мкМ)
- 1 мкл грунтовки Oligo(dT)20 (10 мкМ)
- 1 мкл шаблона кДНК
- 0,2 мкл HF Taq ДНК-полимеразы
- 12,4 мкл ddH2O - Итого: 20 μl
Запустите ПЦР с помощью программы PCR1 (Таблица 1). Включите отрицательный контроль, используя в качестве матрицы исходный продукт РНК без ОТ. Кроме того, может быть включен контроль «без праймера».
Опционально: вложенная ПЦР для повышения специфичности и количества продуктов кДНК. Разведите 1 мкл продуктов ПЦР и отрицательный контроль 1:20 в TE-буфере. Используйте их в качестве шаблона для вторых ПЦР-реакций:
- 4 мкл 5x HF Taq полимеразный буфер
- 0,4 мкл смеси dNTP (по 10 мМ каждая)
- 1 мкл праймера GSP2 (10 мкМ)
- 1 мкл Oligo(dT)20 праймер (10 μM)
- 1 мкл шаблона продукта PCR
- 0,2 мкл HF Taq ДНК-полимеразы
- 12,4 мкл ddH2O - Итого: 20 μl
Запустите вторую ПЦР с помощью программы PCR2 (Таблица 1)
4. Выделение фрагментов кДНК
Приготовьте 1-2% агарозный гель с буфером TAE, используя бромид этидия или альтернативное окрашивание ДНК.
Смешайте 5 мкл образца с 1 мкл 6-кратного гелеобразного буфера.
Загрузите образцы и лестницу ДНК 1kb в качестве маркера и запустите гель при напряжении 120 В в течение примерно 45 минут или до тех пор, пока фронт красителя не достигнет ~75% пути вниз по гелю. Следите за тем, чтобы в образцах не закончился гель.
Проверьте гелевые ленты под УФ-лампой. Для дальнейшей обработки изделий используйте ультрафиолет низкой интенсивности, найдите усиленные полосы и вырежьте их из геля с помощью скальпеля.
Очистите ДНК от геля с помощью такого метода, как замораживание или набор.
Храните очищенные фрагменты кДНК при температуре -20ºC или используйте их сразу для дальнейших применений, таких как секвенирование или клонирование.
Источник: Пабло Санчес Бош2, Шон Коркоран2 и Катя Брюкнер1,2,3 1Эли и Эдит Броуд Центр регенеративной медицины и исследований стволовых клеток 2Кафедр…