June 24th, 2010
Мы сообщаем о развитии системы автоматизированного визуализации и анализа данио трансгенных эмбрионов в виде пластин многоямного. Это демонстрирует возможность измерения зависит от дозы эффект маленькая молекула, BCI, на фактор роста фибробластов экспрессии гена репортера и предоставлять технологию для создания высокой пропускной экраны данио химических веществ.
В этом видео на основе изображений проводится скрининг с высоким содержанием для оценки низкомолекулярной модуляции фактора роста фибробластов Rasm map киназного пути Эмбрионы данио-рерио, трансгенных самцов и самок дикого типа данио-рерио спариваются в клетке для размножения. Оплодотворенные яйца падают на дно и собираются и перекладываются в чашку Петри. Эмбрионы инкубируют в течение ночи, затем помещают в отдельные лунки 96-луночной круглой нижней пластины.
Малая молекула BCI добавляется для гиперактивации передачи сигналов FGF, и планшет инкубируется в течение шести часов. Изображения с каждого воли захватываются с помощью считывателя конфокальных пластин и анализируются с помощью самостоятельно разработанного алгоритма, который сообщает об интенсивности флуоресценции в конкретных эмбриональных структурах. Здравствуйте, я Хиба Кадо из лаборатории доктора Майкла Чанга на факультете микробиологии и молекулярной генетики Университета Питтсбурга.
Здравствуйте, я Андреа Спок из Института разработки лекарств Университета Питтсбурга. Сегодня мы покажем вам процедуру разведения, отбора и подготовки эмбрионов рыбок данио для химической обработки. В 96-луночной пластине мы будем использовать трансгенные эмбрионы, которые сообщают об активности фактора роста стекловолокна и обработаны молекулой, которая гиперактивирует этот прошлый белый.
Мы покажем вам, как мы используем методологию скрининга высокого содержания для автоматического сбора, анализа и количественной оценки активности фактора роста фибробластов в эмбрионах трансгенных рыб данио. Эта процедура будет посвящена платформенной технологии для использования трансгенных рыб данио-рерио и высокопроизводительных химических экранов. Итак, приступим.
За два дня до лечения определите гомозиготных самцов трансгенных данио-рерио и поместите их в отдельные брачные аквариумы. Добавьте разделители в аквариумы, затем добавьте в каждый аквариум по самке дикого типа и оставьте рыб в садках для спаривания на ночь при температуре 28 градусов по Цельсию. На следующее утро снимите сепаратор Через час переместите рыб в новый резервуар и высыпьте зародыши в пластиковое сито.
Перенесите эмбрионы в 100-миллиметровые посуды с раствором Е три и инкубируйте при температуре 28 градусов Цельсия в течение шести-восьми часов. После инкубации рассмотрите эмбрионы под стереомикроскопом. Эмбрионы, пригодные для экспериментов, будут подвергаться газообразованию.
В это время удаляют все неоплодотворенные эмбрионы, которые останутся на стадии одиночных клеток. Кроме того, удалите нежизнеспособные эмбрионы, которые выглядят непрозрачными или деформированными. Затем добавьте свежий раствор Е три и выдерживайте в течение ночи при температуре 28 градусов Цельсия.
На следующий день поместите эмбрионы под флуоресцентный стереомикроскоп, чтобы отсортировать трансгенные эмбрионы по схожей стадии и однородности. Экспрессия GFP 24 эмбрионов HPF демонстрирует видимую среднюю заднюю границу мозга с интенсивной экспрессией GFP и хорошо сформированные глаза с GFP-положительной дорсальной сетчаткой. Эти эмбрионы активны и будут двигаться и извиваться в своем корионе с помощью пластиковой пастбищной пипетки.
Перенесите 24 эмбриона HPF по одному в отдельные лунки 96-луночного планшета. С помощью микропипетки удалите излишки раствора Е три из лунок. Затем с помощью многоканального дозеттера добавьте в каждую лунку по 200 микролитров раствора Е три.
Далее добавьте по два микролитра ДМСО во все лунки в столбцах 1 и 12. Затем добавьте два микролитра БКЛ, приготовленных в ДМСО, следующим образом: один, микромоляр во второй и седьмой колонках. Пять микромоляров на три и восемь, 10 микромоляров на четыре и девять 20.
Микромоляры к столбцам 5 и 10. И, наконец, 25 микромоляров к столбцам 6 и 11. Теперь накройте пластину алюминиевой фольгой и выдержите ее в течение шести часов при температуре 28 градусов Цельсия.
Добавьте по 10 микролитров трики в каждую лунку, чтобы обезболить 30 эмбрионов HPF. Затем загрузите пластину в молекулярные устройства image express ultra open meta express software. Выберите конфигурацию с целью Форекс и максимальным диаметром отверстия.
Настройте лазерную автофокусировку для определения дна пластины и использования заданного оптимального смещения Z. Чтобы определить области интереса, установите область сканирования как один сайт размером 2000 на 2000 пикселей без изгиба. Выберите подходящий тип пластины и аргоновый лазер с разрешением 488 нм при возбуждении на длинах волн излучения 488 на 525 нанометрах.
Затем выберите лунку, содержащую носитель, обработанный эмбрионом, и нажмите кнопку «Найти образец». Прибор выполнит сканирование с автофокусировкой и получит одно изображение, чтобы подтвердить правильность получения изображения. Наугад выберите хорошо обработанное транспортное средство и приобретите изображение.
Если изображение находится в фокусе и показывает выражение GFP в голове. Наведите курсор на самые яркие области и убедитесь, что интенсивность флуоресценции находится в пределах диапазона 16-битной камеры. Менее 65 000 единиц.
Повторите эти действия с другим органом управления автомобилем и несколькими лунками, обработанными смесью. При необходимости отрегулируйте мощность лазера и усиление таким образом, чтобы самые яркие области на положительных контрольных изображениях не насыщались. Затем в окне захвата и управления номерным знаком выберите Захватить номерной знак, чтобы начать сканирование номерного знака.
Прибор будет автоматически получать одно изображение для каждой лунки для всего микропланшета и архивировать их в базе данных SQL Server. После завершения сканирования загрузите изображения в определение D. Проявитель, открыв разработчик с включенной опцией slinger.
Создайте новое рабочее пространство. Затем в меню файлов выберите настраиваемый импорт. Затем перейдите в папку с изображениями и откройте файл с примером.
Выберите фильтр импорта, который распознает формат изображения и структуру файла, сгенерированную молекулярными устройствами платформы image express ultra. Теперь для обработки изображений откройте управляющее изображение и загрузите нужную технологию когнитивной сети или алгоритм или набор правил CNT. Пользовательский алгоритм, используемый здесь, предназначен для автоматической идентификации эмбриона, желтка и головы, а также для количественной оценки яркости и площади структур головы, экспрессирующих GFP, выполнения набора правил до стадии обнаружения головы и желтка.
Чтобы обеспечить правильное назначение желточного мешка и головы, измените набор правил, чтобы скорректировать порог обнаружения желтка, если желток слишком большой или слишком маленький. Далее выполните набор правил на этапе обнаружения светлых структур головы. Чтобы обеспечить правильное назначение областей, выражающих GFP в голове, измените набор правил, чтобы настроить порог обнаружения структур головы в кратных степени интенсивности до тех пор, пока обнаружение ярких структур головы не совпадет с визуальным наблюдением.
Затем выполните весь набор правил вручную на нескольких случайно выбранных изображениях, полученных от эмбрионов, обработанных носителем, и положительных контрольных изображений от эмбрионов, обработанных методом ЧКВ. Чтобы запустить алгоритм на всех изображениях пластин, выберите пластины для анализа и выберите их. Проанализируйте, затем перейдите к оптимизированному набору правил и проанализируйте все скважины.
С помощью встроенного планировщика заданий пустые скважины или неоднозначные изображения будут автоматически исключены из анализа во время сканирования. Отображается постоянно обновляемая карта хранения. Как данные, так и изображения доступны во время прогона для визуального контроля.
Числовые данные и обработанные изображения автоматически сохраняются. После того, как все изображения будут проанализированы, данные можно экспортировать в стороннее программное обеспечение, такое как Excel, GraphPad или призма. На этом рисунке показаны архивные изображения сканирования с обработанного автомобиля и хорошо обработанного ИМК с анализом УНТ и без него.
Применяемый зеленый флуоресцентный белок или GFP обнаруживается в глазу, средней и задней границе мозга и тройничных ганглиях трансгенных эмбрионов. Обратите внимание, что как интенсивность GFP, так и домены экспрессии расширены. У эмбрионов, получавших ИМК, наблюдается дозозависимое влияние ИМК на экспрессию репортерных генов GFP в трансгенных эмбрионах.
Концентрация, необходимая для получения половинного максимального ответа или EC 50, составляла примерно 12 микромоляров. Мы только что показали вам, как разводить, собирать и помещать трансгенные эмбрионы рыб данио в 96 луночных планшетов. Мы добавили увеличивающуюся концентрацию ЧКВ в собственном активаторе сигнального пути.
Мы также показали, как автоматизировать визуализацию трансгенных эмбрионов, и проанализировали изображения с помощью специально разработанного алгоритма, основанного на технологии когнитивных сетей. С помощью этого подхода мы смогли количественно и градуированно измерить эффекты низкомолекулярного активатора передачи сигналов фактора роста фибробластов. При выполнении этой процедуры важно помнить о тщательном выборе эмбрионов, чтобы свести к минимуму вариабельность между образцами.
Ну вот. Спасибо за просмотр и удачи в ваших экспериментах.
Это исследование представляет систему для автоматизированной визуализации и анализа трансгенных эмбрионов данио в многобьёмерных пластинках. Оно демонстрирует возможность измерения дозозависимых эффектов малой молекулы BCI на экспрессию репортёрного гена фактора роста фибробластов, облегчая высокопроизводительные химические исследования данио.
Automated imaging and analysis of zebrafish embryos enables scalable, in vivo assessment of signaling pathway modulation, supporting early target validation and mechanistic de-risking in discovery pipelines. The approach provides quantitative, dose-dependent readouts that improve predictive confidence in compound effects on FGF/RAS/MAPK pathway activity. This positions the method as a translational bridge between phenotypic screening and lead identification in biopharma R&D.
The method integrates into early discovery workflows, supporting hypothesis testing in target validation and enabling scalable assay development for lead identification campaigns.