17 июля 2010 г.
В этой статье описывается процедура индукции ортотопической биолюминесцентного опухолей печени у мышей, и последующий анализ опухолевого роста ограничивается печени с использованием живого целого изображения свечения тела.
Всем привет. Меня зовут Саймон Регенрон. Я один из хирургов-ординаторов в центре исследований рака в Ирландии.
Сегодня я продемонстрирую вам хирургический метод индуцирования метастазов в печени. При нейрональных моделях печень является распространенным очагом метастатического распространения и основной причиной смертности, связанной с онкологическими заболеваниями. Только небольшой процент пациентов с запущенным заболеванием печени подлежат хирургической резекции.
Следовательно, для лечения данного состояния необходимы новые терапевтические средства. Многие модели печеночных метастазов на животных не позволяют воспроизвести заболевание, соответствующее клинической картине. Модель, которую я демонстрирую вам сегодня, является клинически значимой; она относительно проста в освоении и характеризуется очень высоким процентом успеха.
Данная модель предполагает разделение селезенки на две половины. Одна половина селезенки используется для инокуляции опухолевых клеток. Эти опухолевые клетки перемещаются через воротную циркуляцию в печень.
Другая половина селезенки остается нетронутой для сохранения ее иммунологических свойств. Используемая мною клеточная линия стабильно экспрессирует люциферазу, что позволяет проводить биолюминесцентный анализ роста опухоли in vivo. Таким образом, данная модель позволит осуществлять неинвазивный мониторинг терапии заболеваний печени.
Итак, приступим к выполнению сегодняшней процедуры. Нам понадобятся следующие инструменты: диссекционные ножницы, иглодержатель, два малых зажима, скальпель размера 10, шовный материал пролен 5-0 для закрытия кожи, шовный материал ПИА 4-0 для закрытия брюшинного слоя, лигатуры Викрил 3-0 для перевязки селезенки, физиологический раствор, инсулиновая игла 29G для инъекции анестетика, инсулиновая игла 26G для инъекции суспензии опухолевых клеток, суспензия опухолевых клеток в безсывороточной среде, инъекционный анестетик, маркер для кожи и предварительно нарезанные стерильные марлевые тампоны. Моделью мыши, которую я буду использовать сегодня, будет атимическая мышь линии MF1 nude.
Могут быть использованы и другие модели, такие как C 57 и BC, с соответствующими линиями опухолевых клеток. В лаборатории используется грелка и инъекционный общий анестетик. Глубина анестезии оценивается с помощью щипка за пальцы лапы.
Рефлекс отдергивания лапы при защемлении пальца должен отсутствовать. Мышь подходящего размера правильно зафиксирована и закреплена лентой, живот обработан раствором Бетадина и застеран стерильным бельем. Выполняется подреберный разрез, осуществляется доступ в брюшную полость, после чего селезенка идентифицируется и выводится наружу.
Селезенку отделяют от остального тела мыши с помощью предварительно разрезанной стерильной марли. Между двумя сосудистыми ножками накладывают две вертикальные лигатуры и осторожно завязывают их. Селезенку разделяют на две равные половины.
Одна половина селезенки используется для инокуляции опухолевых клеток. Опухолевые клетки медленно вводят в половину селезенки, чтобы избежать утечки. Опухолевые клетки перемещаются через портальный кровоток и попадают в печень.
После 10 минут инкубации инъецированная половина селезенки иссекается, а вторая половина селезенки возвращается в брюшную полость. Для закрытия брюшной полости используют рассасывающиеся шовные материалы и непрерывный шов, а для закрытия кожи — нерассасывающуюся проленовую нить 5-0. Послеоперационное восстановление проводится в стандартном режиме.
Развитие заболевания печени можно оценивать в динамике с помощью 2D-визуализации IVUS. Мыши вводят анестетик, как описано ранее, а затем внутрибрюшинно вводят субстрат люциферазы. Мышь помещают на предметный столик в камеру с температурой 37 °C.
Визуализация проводится в течение трех минут, в результате чего создается совмещенное изображение мыши с детектированной люминесценцией. Через три недели после терапии при вскрытии брюшной полости обнаруживается диффузное поражение печени. В заключение следует отметить, что данный метод позволяет индуцировать локализованный рост метастатических опухолевых клеток в печени, а люминесцентная визуализация обеспечивает возможность наблюдения и количественной оценки роста опухоли, а также применение метода для анализа терапевтического ответа.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье описывается хирургический метод индуцирования ортотопических биолюминесцентных опухолей печени у мышей. Эта процедура позволяет анализировать рост опухоли, ограниченный пределами печени, с помощью прижизненной визуализации биолюминесценции всего тела.
Данная модель позволяет командам по биофармацевтическим исследованиям и разработкам создавать ортотопические метастазы в печени с использованием опухолевых клеток, экспрессирующих люциферазу, что обеспечивает клинически релевантную систему для оценки терапевтических вмешательств. Биолюминесцентная визуализация позволяет проводить неинвазивный лонгитюдный мониторинг опухолевой нагрузки, что способствует механистическому снижению рисков и повышению прогностической уверенности при идентификации ведущих кандидатов. Хирургический подход обеспечивает воспроизводимое приживление опухоли через портальный кровоток, облегчая стандартизированную доклиническую оценку средств терапии метастазов в печени.
Данная модель интегрируется в континуум исследований — от валидации мишени до тестирования доклинической эффективности, способствуя разработке методов терапии метастазов печени.