$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
- Для начала начните с обезвоживания и сушки неподвижного образца, чтобы уменьшить искажение образца, вызванное удалением газов и жидкой воды при пониженном рабочем давлении обычных сканирующих электронных микроскопов (СЭМ).
Чтобы обезвожить образец, промойте его с возрастающей концентрацией этанола в воде до тех пор, пока не будет достигнут 100% этанол. Затем повторите этот процесс с химическим осушителем в этаноле до тех пор, пока образец не будет промыт чистым осушителем. Переложите образец и сушильный агент в выпаривающую чашку. Накройте его минимальным количеством дополнительного сушильного средства и дайте высохнуть в вытяжном шкафу в течение ночи.
Далее закрепите подготовленный образец на верхней части заглушки микроскопа с помощью угольной клейкой ленты. Наконец, нанесите серебряную краску на края заглушки, затем от края заглушки к каждому из образцов, чтобы уменьшить накопление избыточных электронов, которые могут привести к нежелательным артефактам изображения.
В этом эксперименте плодовых мушек, Drosophila melanogaster, готовят к анализу СЭМ с использованием осушителя HMDS.
- Для приготовления Drosophila melanogaster погрузите обезболенных мух в 1 миллилитр фиксатора на 2 часа при температуре 4 градуса Цельсия, убедившись, что они полностью погружены в воду.
С помощью стеклянной пипетки удалите фиксатор. Неподвижный образец дрозофилы трижды промыть в микроцентрифужной пробирке объемом 1,5 миллилитра с 1 миллилитром 0,1 молярфосфатного буфера pH 7,2 при комнатной температуре в течение 10 минут. Используйте стеклянную пипетку для удаления каждой промывки, стараясь не удалить образец.
Затем обезвожьте образец в микрофуге-пробирке объемом 1 миллилитр, используя сортированный этанол в течение 10 минут каждая. Используйте стеклянную пипетку для удаления каждой промывки, стараясь не удалить образец. Храните образец в микроцентрифужной пробирке объемом 1,5 миллилитра, содержащей ровно 100% этанол, чтобы покрыть ее.
Чтобы выполнить химическую сушку мух с помощью HMDS, сначала замените 100% раствор этанола на 1-2 раствора HMDS и 100% этанола на 20 минут. Затем замените раствор раствором HMDS и 100% этанола в соотношении 2 к 1 на 20 минут. Наконец, замените этот раствор на 100% HMDS на 20 минут, а затем повторите процесс один раз.
Переложите образец, который находится в микроцентрифужной пробирке объемом 1,5 миллилитра и HMDS, в одноразовую алюминиевую чашку для взвешивания. Замените 100% HMDS на достаточное количество свежих 100% HMDS, чтобы покрыть образец. Поместите образец в алюминиевую чашку непосредственно в вытяжной шкаф для химикатов для сушки с неплотной крышкой, например, коробкой, чтобы предотвратить попадание мусора на образец, и дайте ему высохнуть в течение 12–24 часов.
Для крепления дрозофилы нанесите маркировку на нижнюю часть алюминиевой монтажной заглушки. С помощью прецизионного пинцета поместите высушенных мушек в нужное положение на угольный клей, прикрепленный к верхней части огрызка под препарирующим микроскопом. Нанесите серебряный проводящий клей по внешним краям птенцов.
Используйте зубочистку, чтобы соединить серебристую краску с мухами, обеспечивая проводимость, следя за тем, чтобы краска не касалась желаемой области изображения. Поместите корешки в коробку для держателя когтей. Затем поместите открытую коробку с держателем корешков в эксикатор и дайте серебряной краске высохнуть не менее трех часов.