JoVE Encyclopedia of Experiments
Биология
0 просмотров • 3:23 мин • April 30th, 2023
- Подготовьте конические инъекционные иглы, вытягивая тонкостенные стеклянные капилляры с помощью иглосъемника. Подержите иглу под микроскопом и сломайте кончик, следя за тем, чтобы отверстие было как раз достаточно большим, чтобы проколоть кутикулу взрослой мухи, не ранив ее больше, чем нужно. Измерьте объем инъекции, загрузив иглу стерильным раствором красителя и соли, а затем выбросив его на каплю минерального масла на ступенчатом микрометре. Используйте шкалу на микрометре для измерения диаметра выброшенной капли, которую можно использовать для расчета выданного объема, и откалибруйте соответствующие настройки инжектора.
Загрузите иглу с раствором для инъекций и установите ее на сопло для инъекций. Обезболите своих мух CO2 и положите их на подушку для мух CO2, которая будет держать их под наркозом. Как только мухи примут правильное положение для вашего эксперимента, приступайте к инъекциям. В примере протокола мы будем вводить взрослым мухам частицы, меченные флуоресцеином, для визуализации in vivo.
- После вытягивания тонкостенных стеклянных капилляров с помощью иглосъемника с помощью микрометра удерживайте иглу под микроскопом и с помощью пинцета номер пять из нержавеющей стали с тонким концом разломайте кончик до диаметра кончика 100 микрометров. Чтобы измерить объем жидкости, которая будет введена в каждую муху, загрузите капиллярную иглу со стерильным 5% пищевым красителем в PBS и выдавите жидкость на каплю минерального масла с микрометром 0,01 миллиметра.
Нанесите 10 микролитров 1,6 миллиграмма на миллилитр частиц на небольшой квадрат парапленки и втяните жидкость в иглу. Установите иглу в форсунку инжектора и выровняйте обезболенных мух вдоль отведенной для них области на нахлыстовой подушечке, подфюзеляжной стороной вверх, с головками, ориентированными к передней части подушечки. Поместите флаконы в соответствующие места на скамейке и впрыскивайте мух в верхний угол брюшной полости пятью 100-миллисекундными насосами жидкости, чтобы доставить в общей сложности около 10 нанолитров частиц. Перекладывайте каждую муху в соответствующий флакон по мере ее введения, отмечая время на флаконе.
Затем загрузите в новую иглу 0,4% раствор Trypan Blue и установите пневматический инжектор в положение «gated», чтобы обеспечить постоянный поток воздуха для выталкивания жидкости из иглы. Через 30 минут после первой инъекции введите Trypan Blue для каждой мухи, пока брюшная полость не станет полной и раздутой. Закрепите мушек на предметных стеклах микроскопа изолентой брюшной стороной вниз, отодвинув крылья в сторону мушки, чтобы закрепить их на ленте. Затем аккуратно вдавите головку в ленту, чтобы мушка не сдвинулась с места.
В данной статье подробно описан протокол введения в организм взрослых мух частиц, меченных флуоресцеином, для визуализации in vivo. Метод включает подготовку конических игл для инъекций и анестезию мух для обеспечения точности введения.
Точная доставка соединений в модельные организмы позволяет снизить механистические риски при выборе терапевтических мишеней и способствует разработке анализов на ранних стадиях. Данный метод представляет собой масштабируемый подход для введения меченых соединений или биопрепаратов во взрослых особей Drosophila, что упрощает процессы фенотипического скрининга и валидации мишеней. Благодаря стандартизации объема инъекций и минимизации повреждения тканей, этот метод повышает воспроизводимость в конвейерах по поиску новых биологических мишеней.
Данный метод вписывается в континуум открытий — от проверки гипотез о мишенях до идентификации соединений-лидеров, особенно когда требуется визуализировать локализацию соединения или модуляцию мишени in vivo.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026