JoVE Encyclopedia of Experiments
Биология
0 просмотров • 3:40 мин • April 30th, 2023
- Создание внехромосомных массивов ДНК с помощью микроинъекций — самый простой метод получения трансгенных штаммов червей — приводит к получению генетических элементов, которые не передаются стабильно во время деления клеток и, следовательно, демонстрируют переменную скорость наследования и уровни экспрессии. Цель интеграции матрицы в хромосому состоит в том, чтобы уменьшить эту генетическую нестабильность и изменчивость.
Для этого необходимо начать с синхронизированной по возрасту популяции трансгенных червей L4, которые несут внехромосомный массив, ранее введенный с помощью микроинъекции, и позволяют им вырасти во взрослых особей. Переложите этих взрослых особей в новые тарелки и дайте им отложить яйца, пока на каждой тарелке не будет не менее 30 яиц. Удалите взрослых особей и дайте яйцам вырасти, пока они не достигнут стадии L4. Затем облучите червей ультрафиолетовым светом. Это приводит к случайным двухцепочечным разрывам в геномной ДНК, где механизм восстановления ДНК червей может произвольно включать массив.
После ночного восстановительного периода подсчитайте количество выживших червей. Небольшой процент мертвых червей свидетельствует об эффективном облучении. Наблюдайте за последующими поколениями для выделения гомозиготных интегрированных трансгенных линий. В примере протокола мы интегрируем экстрахромосомную матрицу с высокой скоростью передачи, несущую флуоресцентный маркер коинъекции, экспрессируемый в глотке.
- Оценка скорости передачи трансгенной линии, которую необходимо интегрировать. Для каждой трансгенной линии выберите 10 взрослых флуоресцентных гравидов на 10 отдельных культуральных планшетах под флуоресцентным стереоскопом. Культивируют животных в инкубаторе для червей, устанавливают при температуре, позволяющей воспроизводству генетического фона.
Наблюдайте за потомством каждый день, чтобы оценить, на какой стадии развития маркер совместной инъекции экспрессируется и может наблюдаться лучше всего. Используя флуоресцентную стереоскопию, оцените скорость передачи потомства, определив процент флуоресцентного потомства. Для интеграции трансгена выберите трансгенную линию с самой высокой скоростью передачи.
Получить популяцию трансгенных животных, синхронизированных на личиночной стадии L4 для интеграции. Выберите 30 взрослых флуоресцентных гравидов на пяти культуральных планшетах. После того, как черви отложили яйца в течение трех-четырех часов при температуре 15 градусов Цельсия, проверьте наличие не менее 30 яиц по тарелке, а затем исключите взрослых особей из тарелок.
Выращивайте животных в инкубаторе для червей до тех пор, пока потомство не достигнет личиночной стадии L4. Поместите каждую пластину, содержащую от 15 до 20 флуоресцентных трансгенных животных L4, в УФ-сшиватель со снятыми крышками. Облучите червей.
Для восстановления инкубируйте облученных червей в течение ночи при температуре 15 градусов Цельсия. Проверьте количество животных, которые остались в живых. В наших руках выживаемость от 80% до 90% является адаптивной для эффективного облучения. Выращивайте облученных животных при температуре от 15 до 25 градусов Цельсия до тех пор, пока потомство не достигнет стадии развития, что позволит наблюдать за экспрессией маркера совместной инъекции.
В данной статье описывается метод интеграции экстрахромосомных массивов ДНК в хромосомы трансгенных червей для повышения генетической стабильности. Протокол включает микроинъекции, УФ-облучение и мониторинг потомства для подтверждения успешной интеграции и экспрессии трансгена.
Экстрахромосомные массивы в трансгенных моделях часто приводят к вариабельной экспрессии трансгена и нестабильному наследованию, что осложняет фенотипический скрининг и процессы валидации мишеней. Хромосомная интеграция, индуцированная УФ-излучением, повышает генетическую стабильность, обеспечивая более надежные показатели передачи и согласованные фенотипические результаты, необходимые для разработки доклинических моделей. Данный метод способствует снижению механистических рисков за счет уменьшения биологической вариабельности в анализах на основе экспрессии трансгена.
Данный метод вписывается в континуум открытий — от ранней валидации мишеней до совершенствования доклинических моделей, где требуется стабильная экспрессия трансгена для получения надежных показателей биомаркеров и фенотипической привязки.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026