$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
- Т-клеточный острый лимфобластный лейкоз, или Т-ОЛЛ, — это тип рака, который возникает, когда лимфоциты не созревают и остаются незрелыми клетками, называемыми лимфобластами. Эти аномальные клетки неэффективны в борьбе с инфекцией. Поскольку эти незрелые клетки быстро делятся, они превосходят по численности здоровые клетки крови и могут перемещаться к таким органам, как селезенка, печень и ЦНС.
Опухоли у рыбок данио похожи на те, которые образуются у человека. Таким образом, рыбки данио являются предпочтительной моделью для создания опухолевых клеток T-ALL.
Начните с выбора трансформированных рыб, которые проявляют флуоресцентные сигналы, указывающие на распространение опухолевых клеток. Удалите усыпленную рыбу голову и промойте полость тела раствором гепарина, чтобы удалить излишки эритроцитов. Теперь введите подходящий буфер в полость тела. Слегка надавите снаружи и соберите буфер, содержащий опухолевые клетки, в микрофугальную пробирку.
Покрасьте клетки трипановым синим цветом и понаблюдайте за ними под микроскопом. Живые опухолевые клетки выглядят флуоресцентными и бесцветными при окрашивании трипановым синим, так как отрицательно заряженная клеточная мембрана исключает попадание отрицательного трипанового синего внутрь клетки. Трипановый синий проникает в мертвые клетки через пористую оболочку, окрашивая их в синий цвет. В следующем протоколе мы изолируем меченые GFP опухолевые клетки T-ALL от взрослых рыбок данио.
- Приготовьте 20 миллилитров 10% термоинактивированного FBS в 0,9X PBS. Добавьте 1 миллилитр раствора FBS/PBS во флакон гепариновой натриевой соли, содержащей 300 единиц антикоагулянта. Затем, используя эпифлуоресцентный микроскоп, выберите рыб, у которых опухолевые клетки проникли на 50% тела, или рыб, у которых выявлены трудности с приемом пищи или плаванием.
Усыпьте рыбу, переложив ее в раствор от 1 до 2 миллиграммов на миллилитр трикаина в рыбьей воде. Понаблюдайте за движением жабр и сердцебиением животного, чтобы подтвердить эвтаназию.
После удаления головы рыбы введите с помощью пипетки 100 микролитров раствора гепарина в ее полость тела, чтобы удалить излишки эритроцитов. Отсадите всю жидкость, которая выливается, и пипетируйте ее в микроцентрифужную пробирку диаметром 1,5 миллиметра. Затем, используя свежие наконечники пипетки, промойте полость тела еще два раза или до тех пор, пока моющий раствор не перестанет содержать кровь, и выбросьте жидкость, собранную со всех промывок.
Чтобы собрать клетки лейкоза, введите 100 микролитров раствора FBS-PBS в предварительно промытую полость тела. Под препарирующим микроскопом слегка надавите на тело рыбы кончиком пипетки, чтобы вытеснить опухолевые клетки. Соберите выделившуюся жидкость в микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 миллилитров. Повторяйте изоляцию до тех пор, пока не будет собрана большая часть опухолевых клеток.
Соберите все клетки в одну микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 миллилитра и выдержите полученную суспензию при комнатной температуре. Затем смешайте выделенные опухолевые клетки с помощью осторожного пипетирования, чтобы диссоциировать клеточные сгустки. Отфильтруйте клеточную суспензию через сетчатый фильтр 40 микрометров и промойте фильтр один-два раза 100 микролитрами FBS-PBS.
После фильтрации держите клетки при комнатной температуре. Наконец, в новой пробирке смешайте 2 микролитра клеточной суспензии с 18 микролитрами 0,04% стерильного раствора трипанового синего. Загрузите 10 микролитров полученной суспензии на гемоцитометр и подсчитайте жизнеспособные флуоресцентные опухолевые клетки.
- Важно собрать чистый образец клеток Т-ОЛЛ. Используемая здесь концентрация Hoechst 33342 основана на количестве собранных живых опухолевых клеток. Дополнительный клеточный мусор или неопухолевые клетки могут мешать анализу.