JoVE Encyclopedia of Experiments
Микробиология
0 просмотров • 3:53 мин • September 26th, 2025
Начните с инокуляции колонии генетически модифицированных бактерий в жидкую среду.
Эти бактерии экспрессируют флуоресцентный гибридный белок во внешней мембране, внешнем защитном слое.
Инкубируются для того, чтобы бактерии выделяли внеклеточные везикулы (ВВ), мембранные наноструктуры, участвующие в межклеточной коммуникации, которые включают флуоресцентный белок.
Переложите культуру в бутылку и центрифугуйте на низкой скорости, чтобы гранулировать клетки.
Переносите надосадочную жидкость, содержащую EVs, клеточные белки и клеточный мусор. Центрифугируйте на высокой скорости и удалите надосадочную жидкость, содержащую мусор.
Отфильтруйте надосадочную жидкость через мембрану, чтобы удалить оставшиеся бактерии и мусор.
Прививаем образец на агар и инкубируем его. Отсутствие бактериальной колонии подтверждает отсутствие бактерий.
Перенесите раствор в ультрафильтрационное устройство с полупроницаемой мембраной и центрифугу, чтобы улавливать EV и устранять более мелкие белки.
Соберите концентрированные электромобили в пробирку для последующего анализа.
Начните с инокуляции отдельных колоний кишечной палочки в 250-1000 миллилитров бульона Лурия-Бертани, или LB, с помощью стерильной петли. Затем инкубируйте культуру аэробным способом в встряхивающем инкубаторе со скоростью 300 оборотов в минуту и 37 градусов Цельсия. После 48 часов инкубации осветите бактериальную культуральную среду, переложив клеточные культуры в чистые 500-миллилитровые полипропиленовые центрифуги для центрифугирования в роторе большой емкости с фиксированным углом наклона при четырех градусах Цельсия и 5000 перегрузках в течение 15 минут.
Перенесите надосадочную жидкость в чистые бутылки центрифуги, осторожно вылив в центрифугу при 10 000-кратном G в течение 15 минут. Затем перенесите надосадочную жидкость в 0,2-микронный фильтрующий фильтр из полиэфирсульфона с вакуумным приводом соответствующего размера и подключите фильтрующее устройство к источнику питания вакуумной стены. Если скорость фильтрации значительно падает, переместите неотфильтрованный материал в новое устройство.
Отфильтрованную среду можно хранить при температуре четыре градуса Цельсия в течение ночи или сразу же подвергнуть дальнейшей обработке. Чтобы проверить полное удаление жизнеспособных клеток, распределите аликвоту отфильтрованной надосадочной жидкости на подходящих агаровых пластинах и убедитесь в отсутствии каких-либо колоний после инкубации в оптимальных для бактериального штамма условиях. Для концентрирования отфильтрованной среды объемом 100 миллилитров загрузите 90 миллилитров отфильтрованной питательной среды в резервуар центробежного ультрафильтрационного устройства с отсечкой молекулярной массы 100 килодальтон и центрифугируйте среду в качающемся роторе ковша при температуре 4 градуса Цельсия и 2000 градусов G с интервалом от 15 до 30 минут до тех пор, пока объем среды в верхнем резервуаре не будет сконцентрирован до менее чем 0,5 миллилитров.
Чтобы долить в резервуар оставшуюся отфильтрованную питательную среду, удалите проточный поток в нижней части устройства для восстановления баланса. Если вязкость концентрированной среды в резервуаре заметно увеличена, разбавьте среду PBS и повторно сконцентрируйте центрифугированием для уменьшения любых внеклеточных везикул или белков EV, меньших, чем порог молекулярной массы в 100 килодальтон. Затем перенесите концентрированную среду в пробирку с низким содержанием белка и храните при температуре четыре градуса Цельсия в течение ночи.
В данной статье описывается метод выделения внеклеточных везикул (ВКВ) из генетически модифицированных бактерий, экспрессирующих флуоресцентный слитый белок. Процесс включает несколько этапов центрифугирования и фильтрации для обеспечения удаления жизнеспособных клеток и концентрирования ВКВ для последующего анализа.
Выделение бактериальных внеклеточных везикул (ВКВ) позволяет снизить механистические риски на ранних этапах поиска новых лекарственных средств, обеспечивая масштабируемый источник наночастиц мембранного происхождения для валидации мишеней и фенотипического скрининга. Данный метод способствует разработке анализов за счет стандартизированного и воспроизводимого обогащения ВКВ, что снижает вариабельность при последующих функциональных анализах. Это делает данную методику трансляционным инструментом для оценки терапевтических препаратов или вакцин бактериального происхождения с повышенной прогностической достоверностью.
Данный метод вписывается в континуум открытий — от ранней валидации мишеней до идентификации ведущих соединений, где бактериальные EV служат механистическими зондами или средствами доставки. Он позволяет реализовать рабочие процессы скрининга, предоставляя очищенные, количественно определяемые фракции EV для функционального анализа. Процесс обеспечивает возможность аналитики посредством флуоресцентного или биохимического детектирования обогащенных EV, что облегчает сравнительный анализ различных условий. Возможность промышленного повторного использования обеспечивается масштабируемостью протокола и его стандартизацией для различных бактериальных штаммов.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026