JoVE Encyclopedia of Experiments
Микробиология
0 просмотров • 2:46 мин • September 26th, 2025
Начните с пробирки, содержащей подвижные бактерии, экспрессирующие зеленый флуоресцентный белок.
С помощью иглы нанесите бактерии на мягкую питательную агаровую пластину, чтобы изучить подвижность поверхности бактерий.
Далее переверните пластину, чтобы предотвратить образование конденсата воды на поверхности агара.
Инкубируйте пластину, чтобы бактерии могли расти.
По мере продвижения инкубации бактерии используют свои жгутики для инициации миграции наружу от точки инокуляции.
После завершения инкубации откройте крышку и поместите перевернутую пластину в систему визуализации стороной агара к оптическому детектору, чтобы обеспечить точную визуализацию.
Накройте тарелку крышкой, наполненной водой. Закройте его, чтобы поддерживать влажную среду.
Закройте систему визуализации и начните цейтраферную съемку изображений.
Со временем миграция бактерий приводит к образованию зеленых пальцеобразных выступов, называемых усиками. Эти бактериальные структуры простираются наружу от центральной точки инокуляции, подтверждая подвижность поверхности бактерий.
Инокулируйте от одного до пяти микролитров ночной культуры на высушенные пластины роевого агара, протыкая поверхность агара стерильной зубочисткой или проволочной иглой для инокуляции, в зависимости от штамма бактерий, перенесите планшеты для анализа роя в инкубатор с температурой, установленной либо 30 градусов Цельсия, либо 37 градусов Цельсия, либо 42 градуса Цельсия. Переверните пластины таким образом, чтобы лишняя влага конденсировалась на крышке пластины, а не на агаре, уравновесьте бактерии при определенных температурах напряжения в течение двух или четырех часов непосредственно перед покадровой съемкой.
Затем перенесите пластины в устройство визуализации in vivo таким образом, чтобы бактерии на поверхности агара были направлены вниз к перевернутой камере устройства. Заполните все крышки чашек Петри небольшим количеством воды. Затем поместите каждую крышку стороной воды вверх поверх перевернутых агаровых пластин.
Внутри блока формирования изображения загерметизируйте корпус формирования изображения для поддержания постоянного уровня влажности, отрегулируйте настройки изображения устройства формирования изображения и начните покадровую съемку активности роя. После получения изображений в режиме реального времени динамика роения бактерий может быть проанализирована с помощью стандартного анализа изображений, такого как Image J.
В данном исследовании изучается поверхностная подвижность бактерий с использованием подвижных бактерий, экспрессирующих зеленый флуоресцентный белок. Методология включает таймлапс-визуализацию для наблюдения за характером миграции бактерий на чашках с питательным агаром.
Визуализация поверхностной подвижности бактерий позволяет получить представление о механизмах поведения микробов, что имеет важное значение для разработки антимикробных препаратов и моделей инфекций, связанных с биопленками. Таймлапс-визуализация бактерий, экспрессирующих GFP, позволяет количественно оценить динамику подвижности, что способствует валидации мишеней в процессах скрининга антимикробных средств. Данный анализ повышает прогностическую достоверность на ранних этапах поиска за счет выяснения механизмов вирулентности, зависящих от подвижности.
Анализ роевого поведения (swarming assay) вписывается в непрерывный процесс разработки лекарственных средств — от скрининга гипотез о мишенях до оптимизации соединений-лидеров, что особенно актуально для программ по поиску противомикробных и антибиофильмовых средств.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026