Механическое разрушение отдельных червей для оценки изменчивости взаимодействий хозяина и бактерии

0 просмотров5:09 мин • October 30th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Начните с соответствующих возрасту, стерильных, только что убитых взрослых червей C. elegans с пермеабилизированной кутикулой, взвешенных в буфере.

Эти черви заражены бактериями в кишечном тракте.

Возьмите планшет для глубоких лунок, содержащий абразивные частицы в буфере, и перенесите по одному червю в каждую лунку.

Накройте тарелку герметизирующей пленкой и крышкой.

Инкубируйте пластину при низкой температуре, чтобы предотвратить перегрев при разрушении тканей.

Нажмите на крышку, чтобы уплотнить лунки.

С помощью тканевого разрушителя механически встряхните пластину. Абразивные частицы разрушают ткани червей, высвобождая кишечные бактерии.

Постучайте по пластине и центрифугируйте ее, чтобы измельчить содержимое.

Смешайте содержимое, чтобы равномерно распределить бактерии, затем переложите их в свежие лунки.

Последовательно разводите бактериальную суспензию в буфере.

Разбавьте разбавленные пластины на агаровых пластинах и инкубируйте, чтобы обеспечить образование колоний.

Подсчитайте колонии, чтобы количественно оценить вариации кишечной бактериальной нагрузки у отдельных червей.

Чтобы подготовиться к механическому разрушению червей, приобретите стерильную двухмиллилитровую лунку глубиной 96 лунок и силиконовую крышку пластины.

С помощью стерильного совка добавьте небольшое количество стерильного карбида кремния 36 в каждую лунку так, чтобы сетка едва покрывала дно лунки. Добавьте в каждую лунку по 180 микролитров червячного буфера M9. Подпишите столбцы и строки, а затем неплотно накройте пластину крышкой из силиконовой пластины.

Далее переложите пропитанных червей в небольшую чашку Петри с M9TX-01, заполненную на глубину до одного сантиметра. С помощью препарирующего микроскопа пипеткой выведите отдельных червей в объемах 20 микролитров и перенесите их в отдельные лунки 96-луночного планшета. Чтобы удалить червей, прилипших к пипетке, отасуньте 20 микролитров M9TX-01 из прозрачной области чашки Петри и выпустите его обратно в чашку. После того, как все черви будут перенесены, накройте 96-луночный планшет листом гибкой герметизирующей пленки стороной с бумажной подложкой, обращенной вниз к лункам для образцов.

Слегка положите силиконовый уплотнительный коврик поверх гибкой герметизирующей пленки, не вдавливая крышку в лунки. Поместите тарелку при температуре четыре градуса Цельсия на 30–60 минут, чтобы предотвратить перегрев во время сбоя. После охлаждения пластины плотно прижмите силиконовый уплотнительный коврик к лункам, чтобы запечатать их.

Затем закрепите пластины в тканевом разрушителе. Встряхивайте пластины в течение одной минуты с частотой 30 герц. Затем поверните пластины на 180 градусов и повторите встряхивание в течение одной минуты.

Сильно постучите пластинами по скамье два или три раза, чтобы удалить песок с гибкой герметизирующей пленки. Центрифугируйте планшеты при 2400 умноженных на g в течение двух минут, чтобы собрать образцы на дне лунок. Затем снимите силиконовую крышку и снимите уплотнительную пленку.

Чтобы приготовить десятикратное серийное разбавление перевариваемых червями, залейте 180 микролитров одного X PBS в ряды от B до D 96-луночного планшета. С помощью многолуночного дозатора, установленного на 200 микролитров, медленно перемешивайте перевариваемый червем методом пипетирования. Перенесите максимальное количество жидкости в ряд А 96-луночного планшета, содержащего PBS.

С помощью многоканальной пипетки удалите 20 микролитров из верхнего ряда и распределите в ряд В, после чего перемешайте. Повторите этот шаг для ряда от B до C, а затем для ряда C до D, чтобы получить 1000-кратное разбавление. Для бактериального количественного определения моноколонизированных червей внесите от 10 до 20 микролитров каждого разбавления на твердые агаровые планшеты. Для многовидовой колонизации нанесите по 100 микролитров каждого разведения на 10-сантиметровые агаровые пластины.

08:19

Высокая пропускная способность Количественный RT-PCR в одиночных и массовых C. elegans образцы с использованием нанофлюидных технологий

Похожие видео

0 Просмотры

09:47

Селективная очистка диких нематод caenorhabditis для обогащения бактерий кишечного микробиома

Похожие видео

0 Просмотры

11:40

Высокопроизводительный скрининг микробных изолятов с воздействием на здоровье Caenorhabditis elegans

Похожие видео

0 Просмотры

03:22

Оценка колонизации кишечных бактерий у бесстерильных C. elegans

Похожие видео

0 Просмотры

02:45

Высокопроизводительный флуоресцентный анализ для изучения взаимодействия микроорганизмов и червей

Похожие видео

0 Просмотры

02:05

Оценка бактериальной вирулентности с помощью жидкостного токсичного теста C. elegans

Похожие видео

0 Просмотры

04:15

Detecting Bacterial Virulence Using Amoeba as a Host System

Похожие видео

0 Просмотры

11:18

Автоматизированная Разделение С. Элеганс Переменно колонизирована бактериальным патогеном

Похожие видео

0 Просмотры

11:58

Нематоды Caenorhabditis Elegans - универсальный в Vivo модель для изучения хост микробных взаимодействий

Похожие видео

0 Просмотры

09:00

Microfluidic платформа для продольной Imaging в Caenorhabditis elegans

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 22 августа 2026