$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с охлаждённой кюветы, содержащей суспензию электрокомпетентных бактериальных клеток, которые обладают повышенной восприимчивостью к мембранной проницаемости.
Суспензия также содержит биомолекулы, помеченные органическими флуорофорами.
Примените высоковольтный электрический импульс для создания временных пор мембраны, позволяющих биомолекуле проникнуть в цитоплазму.
Добавьте насыщенную питательными веществами среду и перенесите клетки в трубку. Инкубировать для стимулирования восстановления мембраны.
Центрифугуйте клетки, затем уберите супернатант, содержащий неинтернализированные биомолекулы.
Суспензировать клетки в буфере с высоким содержанием соли с моющим средством для отделения биомолекул, прилипших к поверхности.
Снова центрифугировать, отбросить супернатант и снова подвесить ячейки в буфере.
Перенесите суспензию на фильтр и центрифуга, чтобы удалить поток, содержащий любые невнутренние биомолекулы. Затем промывайте клетки свежим буфером и снова суспензуйте.
Закрепите клетки на агарозной площадке и разместите накладку. Флуоресцентно маркированные бактерии готовы к визуализации.
Начиная с запаса флуоресцентных биомолекул, приготовленных в буфере с низкой ионной силой, переносите до пяти микролитров биомолекул либо в 20-литровый аликвот компетентных бактерий, либо 50 микролитров компетентных дрожжей. Количество флуоресцентных биомолекул, инкубируемых с клетками, напрямую коррелирует с количеством интернализированных биомолекул в клетке после электропорации.
Инкубировать смесь на льду до 10 минут. Одновременно выберите электропорационную кювету с подходящим расстоянием между электродами и охлаждайте на льду. Переложите ячеточную смесь в предварительно охлаждённый кювет.
Аккуратно постучите по кювете несколько раз, чтобы удалить пузырьки из раствора. Удалите влагу с кюветы бумажным полотенцем и положите её в электропоратор. Подайте импульс высокого напряжения к ячейкам.
Сразу после этого процесса убедитесь, что временная постоянная, отображаемая на электропорате, составляет от четырёх до шести миллисекунд. Низкие временные константы часто связаны с наличием избытка соли или пузырьков внутри кювета, что может снижать или полностью подавлять поглощение биомолекул клетками. Более высокие импульсы напряжения улучшают нагрузку на ячейку, но также могут влиять на жизнеспособность ячеек.
Сразу после электропорации добавьте 500 микролитров богатой среды и перенесите клетки в свежую трубку объемом 1,5 миллилитра. Дайте клеточной мембране восстановиться, инкубировав бактерии при 37 градусах Цельсия или дрожжи при 29 градусах Цельсия в течение 2–10 минут. После включения биомолекулы и восстановления роста опустите клетки на одну минуту в предварительно охлаждённой центрифуге с температурой четыре градуса Цельсия и выбросьте супернатант.
Повторно суспензировать гранулу в 500 микролитрах буфера и повторить процессы вращения вниз, супернатантного удаления и буферного восстановления ещё три раза. Эти этапы промывания удаляют все следы неинтернализированных биомолекул из клеточной суспензии.
В случае интернализации белка с меткой дополнительной степенью очистки выполняется пипетирование клеточной суспензии в трубку объемом 1,5 миллилитра с мембранным фильтром на 0,22 микрона сверху. Отдельте ячейки от буфера центрифугированием, при этом убедитесь, что над фильтром осталось достаточно жидкости, чтобы клетки не высыхали, и избавьтесь от фракции проточного фильтра. Под фильтром добавьте 500 микролитров свежего PBS поверх ячеек и повторите комбинацию с добавлением свежего PBS ещё два раза.
Проведите последний занос при 3 300 г на одну минуту, чтобы убрать предыдущую промывку PBS. Суспензируйте клетки с помощью 150 микролитров PBS.
Наконец, снимите верхнюю крышку с ранее подготовленной агарозной подушечки. Загрузите ячейки на площадку, пипетируя 10 микролитров подвески ячейки по опущению. После установки новой, очищенной крышки поверх агарозной площадки, сжатые клетки теперь готовы к флуоресцентной микроскопии.