Оценка влияния ингибиторов на образование пелликул у Bacillus subtilis

0 просмотров2:57 мин • February 26th, 2026

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Начните с культуры Bacillus subtilis — почвенной бактерии, выращенной в питательной среде.

Центрифуга для гранулирования бактерий, сбросьте супернатант, затем снова суспензируйте гранулу в химически определённой среде, поддерживающей образование биопленки.

Измерьте оптическую плотность культуры, чтобы определить соответствующую концентрацию бактерий.

Добавляйте культуру в колодцы с определённой средой для контроля и определённой средой с ингибитором для теста.

Инкубировать в статических условиях. Бактерии мигрируют вверх и накапливаются на границе воздух-жидкость, где повышенная доступность кислорода способствует росту бактерий.

В контрольной яме бактерии на интерфейсе выделяют компоненты внеклеточного матрикса и образуют плавающую биоплёнку, известную как пелликула — защитный слой, повышающий выживание бактерий.

В испытательной яме ингибитор нарушает синтез матрицы, что приводит к рассеиванию бактериальных популяций.

Этот анализ показывает, что ингибиторы блокируют образование биопленки, что является ключевой особенностью бактериального патогенеза.

Сначала выберите подходящую одну колонию и пересадите её в 3 миллилитра бульона LB. Поместите эту стартовую культуру в трясущий инкубатор на 4 часа при 37 градусах Цельсия. После инкубации возьмите 1,5 миллилитра заквасковой культуры и центрифугуйте в течение четырёх минут.

Аккуратно удалите супернатант, а затем снова суспензуйте гранулу в 1,5 миллилитрах среды MSgg. Для выращивания пелликул подготовьте 12-колодную клеточную культивационную пластину, добавив 3 миллилитра MSgg в каждую яму. К некоторым из этих скважин добавьте MSgg с малым молекулярным ингибитором в концентрационном диапазоне, распределяя расположение разных концентраций по антенне, чтобы избежать эффектов по краям.

Измерьте оптическую плотность на 600 нанометрах повторно взвешенной стартерной культуры. Культура должна быть от 0,6 до 1. Это критически важно для устойчивости системы.

Инокулируйте каждую ямку посевной пластины 3 микролитрами повторно суспензированной стартовой культуры. Затем инкубировать пластину при 23 градусах Цельсия в течение трёх дней в статических условиях. Затем вынимите пластину из инкубатора и осмотрите пелликулы.

07:47

Анти-вирулентных Срыв патогенных биопленки с помощью конструктивных Кворум-тушения Lactonases

Похожие видео

0 Просмотры

10:00

Ориентация биопленки Associated Стафилококк Использование ресазурин На основе лекарственной чувствительности анализа

Похожие видео

0 Просмотры

11:47

Оценка эффективности органических пероксикислот для уничтожения молочных биопленок с использованием подхода, сочетающего статические и динамические методы

Похожие видео

0 Просмотры

13:28

Одноклеточный анализ Сенная Bacillus Биопленки с помощью флуоресцентной микроскопии и проточной цитометрии

Похожие видео

0 Просмотры

03:38

Количественная оценка подавления биопленки, вызванной ферментами, у патогенных бактерий

Похожие видео

0 Просмотры

03:47

Микроскопическая оценка ингибирования образования биопленки, опосредованной ферментами

Похожие видео

0 Просмотры

03:37

Анализ замедленного ингибирования роста для оценки действия антимикробных соединений, полученных из бактерий

Похожие видео

0 Просмотры

10:50

Качественный и количественный анализы для обнаружения и определения характеристик белка Противомикробные

Похожие видео

0 Просмотры

07:42

Отложенный роста Анализ ингибирования для количественной оценки влияния бактерий, полученных Противомикробные по конкуренции

Похожие видео

0 Просмотры

10:17

Методологии для изучения B. Сенная биопленки в качестве модели для Характеризуя Molecule биопленки Small ИНГИБИТОРЫ

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 1 августа 2026