$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с приема суспензии культивируемых клеток реципиента в пробирке. Дополните пробирку индуцируемыми плазмидами, содержащими интересующий ген. Экспрессия этого гена находится под контролем восходящей промоторной последовательности, слитой с оператором тетрациклина или TetO, образуя тетрациклин-чувствительный элемент или TRE.
Кроме того, добавьте регуляторные векторы без тетрациклина, каждый из которых содержит ген, кодирующий рекомбинантный трансактиваторный белок тетрациклина или tTA. Электропорируйте смесь клетки и ДНК с помощью электрических импульсов для облегчения поглощения плазмид клеткой.
После электропорации поместите клетки в планшеты и инкубируйте в течение желаемого периода времени. При попадании в ядро вектор тетрациклин-офф экспрессирует белок tTA. tTA представляет собой гибридный белок, содержащий репрессор Tet, или группу TetR, и трансактиваторный домен вирусной транскрипции VP16.
Фрагмент TetR связывается с последовательностью TetO элемента TRE, в то время как домен VP16 позволяет РНК-полимеразе синтезировать мРНК из нижележащей ДНК, что в конечном итоге приводит к экспрессии генов. Замените питательную среду в культуральной пластине на доксициклинсодержащую среду и инкубируйте.
Доксициклин – синтетический аналог тетрациклина – связывается с белком TetR и изменяет его конформацию. Это изменение нарушает взаимодействие белка TetR с последовательностью TetO, подавляя экспрессию гена-мишени.
Засейте клетки в соотношении 1 х 106 клеток/см2 в 100-миллиметровых чашках Петри, при наличии полной минимально необходимой среды. Культивировать в течение 24 часов при 37 градусах Цельсия в 5% углекислом газе с влажностью. На следующий день добавьте 500 микролитров полной среды без антибиотика в каждую лунку новой 12-луночной пластины и предварительно прогрейте пластину при температуре 37 градусов Цельсия в течение 30 минут.
Во время этой инкубации добавьте 1 мкг ответной плазмиды и 1 мкг регуляторного вектора в одну 1,5-миллилитровую пробирку на лунку. Промойте клетки альвеолярного эпителия 10 миллилитрами на лунку при температуре 37 градусов Цельсия PBS без кальция или магния и обрабатывайте клетки 5 миллилитрами на лунку с температурой 37 градусов Цельсия 0,05% трипсином в течение двух-четырех минут в инкубаторе для клеточных культур.
Когда клетки отделятся, нейтрализуйте трипсин с помощью 10 миллилитров на лунку полной среды без антибиотика и соберите клетки в новую 50-миллилитровую пробирку. Вымойте посуду с 4 миллилитрами свежей среды, чтобы собрать оставшиеся клетки, и осадите клетки путем центрифугирования.
Повторно суспендируйте гранулу в 1 миллилитре PBS для подсчета, и снова центрифугируйте ячейки. Повторно суспендируйте гранулу при плотности 4 x 107 клеток/мл буфера для ресуспензии и добавьте 4 x 105 клеток в каждую пробирку плазмиды и вектора с помощью осторожного перемешивания. Поместите 1 тюбик в устройство для электропорации и заполните пробирку 3,5 миллилитрами электролитического буфера.
Полностью нажмите на поршень, чтобы вставить позолоченный наконечник электрода в пипетку, и аккуратно перемешайте содержимое трубки. Осторожно отсасывайте клетки с помощью пипетки, и вставляйте пипетку в электропорационную станцию до тех пор, пока не будет слышен щелкающий звук. Выберите подходящий протокол электропорации для альвеолярных эпителиальных клеток и нажмите кнопку «Пуск» на сенсорном экране.
Сразу после трансфекции извлеките пипетку и перенесите клетки в одну лунку предварительно разогретой 12-луночной пластины. После того, как все клетки будут подвергнуты электропорации и глюминированию, поместите планшет в инкубатор для клеточных культур, заменив надосадочную жидкость в каждой лунке на полноценную среду с антибиотиками через два дня. Успех трансфекции может быть подтвержден экспрессией EGFP, наблюдаемой с помощью флуоресцентной микроскопии или проточной цитометрии с использованием контрольного вектора.
Чтобы подавить транскрипцию интересующего гена, через 72 часа после трансфекции замените надосадочную жидкость 1 миллилитром на лунку полной среды с добавлением 1 микрограмма на миллилитр свежеприготовленного доксициклина. Чтобы оценить период полувыведения мРНК интересующего гена, верните планшет в инкубатор для клеточных культур с 15 минут до 6 часов.
Промывка одной лунки 1 миллилитром ледяного PBS перед лизисом клеток 500 микролитрами буфера для лизиса из коммерчески доступного набора для экстракции фенол-хлороформной РНК и осторожное встряхивание в каждый экспериментальный момент времени. Затем выделите РНК в соответствии с инструкциями набора и определите выход и чистоту РНК с помощью спектрофотометрии на глубине 230, 260 и 280 нанометров.