$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Остеокласты, многоядерные макрофаги, способствуют резорбции кости – расщеплению костной ткани и высвобождению костных минералов.
Для количественного определения резорбции остеокластов in vitro культивировали мононуклеарные клетки периферической крови человека в макрофагальном колониестимулирующем факторе, M-CSF, содержащем среды для дифференцировки в клетки-предшественники остеокластов и прикрепления. Соберите прародители остеокластов и центрифугу.
Пипеткой пипетку суспензию ресуспендированных клеток в среде, дополненной М-КСФ и рецепторным активатором лиганда ядерного фактора каппа-Β RANKL, в лунки многолуночных планшетов, покрытых фосфатом кальция, имитирующими неорганический костный компонент. M-CSF и RANKL вызывают дифференцировку предшественников остеокластов и слияние в остеокласты, активируя резорбцию.
Активированные остеокласты прикрепляются к покрытию фосфата кальция, реорганизуя их цитоскелет, образуя богатую актином зону уплотнения, и развивают взъерошенные границы, которые выделяют протоны и кислотные гидролазы. Образующаяся кислая среда растворяет кальций-фосфатное покрытие, высвобождая ионы кальция и фосфата и образуя резорбционную яму.
После инкубации лунки промыть, удаляя растворившиеся ионы. Фиксируют и пермабилизируют остеокласты для последующего окрашивания. Окрасьте нити актина подходящим красителем. Покрасьте ядра ДНК-связывающим красителем. Окрасьте кальций в лунном покрытии кальций-связывающим красителем.
Под флуоресцентным микроскопом функциональные остеокласты демонстрируют множественные флуоресцентные ядра и актиновые кольца, имеющие решающее значение для резорбтивной функции. Резорбционные ямки выглядят как черные участки на флуоресцентном покрытии из фосфата кальция, наложенном на актиновые кольца.
Используя подходящее программное обеспечение, количественно оцените площадь ямки, определив остеокластическую резорбцию.
Ресуспендируйте PBMC в полном альфа-MEM, содержащем 20 нг/мл колониестимулирующего фактора макрофагов, и затравите 2,5 x 105 клеток/см2 PBMC в колбе. Инкубируйте покрытые фосфатом кальция планшеты с 50 микролитрами фетальной бычьей сыворотки при температуре 37 градусов Цельсия в течение одного часа.
Затем дважды промойте колбу PBS, чтобы отделить предшественники остеокластов от мертвых или неадгезивных клеток. Затем добавьте 4 миллилитра трипсина на 75 см2 колбы. Через 30 минут остановите пищеварение, добавив 4 миллилитра полного альфа-MEM. Затем аккуратно отделите ячейки с помощью скребка для клеток.
Переложите клетки в 50-миллилитровую трубку, и подсчитайте общее количество клеток с помощью счетной камеры. Центрифугируйте пробирку при давлении 350 x g в течение семи минут, чтобы гранулировать клетки, и повторно суспендируйте гранулу в полном альфа-MEM, содержащем M-CSF и RANKL, чтобы получить 1 x 106 клеток/мл.
Аспирируйте фетальную бычью сыворотку из пластины, покрытой фосфатом кальция, и пипеткой 200 микролитров клеточной суспензии на лунку. После инкубации дважды промойте клетки PBS. Зафиксируйте клетки 4% параформальдегидом на 10 минут, и снова промойте PBS.
Для окрашивания добавьте к неподвижным клеткам пермеабилизационный буфер, и инкубируйте их в течение пяти минут.
Чтобы окрашивать актиновые филаменты, инкубируйте клетки со 100 микролитрами раствора фаллоидина, меченного AlexaFluor 546, в PBS в течение 30 минут. Затем отсасывайте красящий раствор и окрашивайте ядра, используя 100 микролитров Hoechst в течение 10 минут.
Окрашиваем кальцийфосфатное покрытие 100 микролитрами 10 микромолярного кальцеина в PBS в течение 10 минут. После трижды промывки PBS сделайте снимки.