Анализ фазового разделения белков: оптогенетический метод разделения фаз мутантных РНК-связывающих белков в спинальных моторных нейронах личинок рыбок данио-рерио

0 просмотров4:38 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ядерные РНК-связывающие белки, RBP, представляют собой многофункциональные белки, состоящие из упорядоченных областей с четко определенной трехмерной структурой и менее стабильных, внутренне неупорядоченных областей, IDR.

При некоторых нейродегенеративных заболеваниях мутации, специфичные для IDR, приводят к тому, что RBP неправильно локализуются в цитоплазме и аберрантно вступают в слабые взаимодействия, образуя динамические безмембранные включения - явление, называемое разделением фаз. В конечном итоге эти включения созревают в токсичные, нерастворимые агрегаты, что приводит к дисфункции и дегенерации нейронов.

Чтобы исследовать разделение фаз RBP in vivo с помощью оптогенетики, начните с обезболиванной, дехорионированной трансгенной личинки данио-рерио, экспрессирующей IDR-мутированную RBP, слитую с флуоресцентным репортером и чувствительным к синему свету фоторецепторным доменом, в подходящем буфере.

Затем установите личинку лаконично на расплавленную агарозную каплю для визуализации спинного мозга. Дайте агарозе застыть, обездвижив личинку. С помощью конфокального микроскопа можно получить изображения спинного мозга для визуализации флуоресцентных RBP, локализованных в ядрах нейронов.

Теперь извлеките личинку из агарозы и переложите в буферную многолуночную пластину. Поместите пластину на оптимизированную панель синего светоизлучающего диода и подсветите личинку.

Под воздействием синего света мутантные RBP неправильно локализуются в цитоплазме, где фоторецепторные домены олигомеризуются и образуют кластеры, приближая IDR RBP в непосредственной близости и способствуя их самоассоциации в безмембранные включения.

После иллюминирования внедрите личинку в агарозу и сфотографируйте ее спинной мозг. Флуоресцентные RBP проявляются в виде дискретных компартментов, диспергированных в цитоплазме нейрона.

Для визуализации личинок данио-рерио, экспрессирующих оптогенетический TDP-43, дехорионате двойных трансгенных рыб и обезболите их в буфере E3, содержащем 250 микрограмм на микролитр трикана.

Затем предварительно нагрейте 1% низкоплавкую агарозу, содержащую 250 микрограмм этил-3-аминобензоата метансульфоната до 42 градусов Цельсия, затем нанесите каплю агарозы на стеклянную посуду. Диаметр куполообразной агарозной капли на стеклянной посуде должен составлять от 8 до 10 миллиметров.

Далее с помощью пастеровской пипетки добавьте обезболенную рыбу к агарозе на стеклянной тарелке. Сведите к минимуму количество буфера Е3, добавляемого в агарозу вместе с рыбой. Затем перемешайте с помощью пипетки несколько раз.

Во время застывания агарозы удерживайте рыбу на боку с помощью иглы шприца, таким образом, чтобы спинной мозг находился в соответствующем горизонтальном положении. После того, как агароза застынет, добавьте пару капель буфера E3 на куполообразную рыбу, установленную на агарозе.

С помощью конфокального микроскопа, оснащенного объективом с 20-кратным погружением в воду, получить серийные конфокальные z-сечения спинного мозга. Включите клоаку на вентральной стороне рыбы в интересующих областях в качестве ориентира для идентификации и сравнения позвоночных сегментов в разных временных точках.

Как только визуализация будет завершена, с помощью иглы шприца осторожно расколойте агарозу и удалите рыбу из агарозы. Следите за тем, чтобы количество времени, в течение которого рыба погружается в агарозу, должно быть как можно короче, хотя заделка агарозы менее чем на 30 минут не влияет на жизнеспособность рыбы.

Добавьте 7,5 миллилитров буфера Е3 в одну лунку чашки на 6 лунок и поместите в эту лунку изображенную двойную трансгенную рыбу. Затем поставьте тарелку на светодиодную панель, держа тарелку, и светодиодную панель на расстоянии 5 миллиметров друг от друга с помощью проставки, и включите синюю светодиодную лампочку.

Держите немного двойных трансгенных рыб в отдельной 6-луночной посуде, накрытой алюминиевой фольгой для неосвещенных контрольных рыб. По истечении желаемого времени освещения сфотографируйте спинной мозг освещенной рыбы, как показано ранее.

10:29

Морфологическая и функциональная оценка аксонов и их синапсов во время смерти Аксона в Drosophila melanogaster

Похожие видео

0 Просмотры

10:48

Генерация двигательных единиц человека с функциональными нервно-мышечными соединениями в микрофлюидных устройствах

Похожие видео

0 Просмотры

07:52

В городе Виво Беспроводной оптогенетический контроль квалифицированного двигательного поведения

Похожие видео

0 Просмотры

11:33

Микроинъекция мРНК и Олигонуклеотиды морфолино антисмысловых в данио рерио эмбрионов.

Похожие видео

0 Просмотры

07:29

Парные Patch Clamp Recordings от Мотор-нейрон и целевые скелетных мышц в данио рерио

Похожие видео

0 Просмотры

06:55

В естественных условиях электропорации Morpholinos в Retina взрослых данио рерио

Похожие видео

0 Просмотры

05:10

Неинвазивный подход к изучению электрофизиологии двигательных нейронов у эмбрионов рыбок данио

Похожие видео

0 Просмотры

12:31

In Vivo Моделирование Morbid геноме человека Данио рерио использованием

Похожие видео

0 Просмотры

05:48

Микроманипуляция экспрессии генов в головном мозге взрослых данио рерио Использование церебровентрикулярных Микроинъекции олигонуклеотиды Морфолино

Похожие видео

0 Просмотры

10:18

Мембранный потенциал монокристалла монокристалла в живых эмбрионах данио

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 22 августа 2026