$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните анализ кормления комаров с приготовления кровяной муки, добавляя желаемую концентрацию активного исследуемого соединения в дефибринированную кровь кролика. В кровяной муке отсутствует фибрин, препятствующий свертыванию крови.
Загрузите эту кровяную муку в порт подачи мембранного устройства питания. Прикрепите его к нагревательному агрегату, поддерживая оптимальную температуру крови. Смажьте мембрану раствором молочной кислоты.
Поместите этот аппарат в клетку со взрослыми, предварительно истощенными самками комаров, чтобы увеличить шансы на кормление. Инкубируйте в темноте. Молочная кислота привлекает комаров к кормовому блоку. Темные условия побуждают их к кормлению.
Перенесите откормленных кровью комаров в камеру роста. После переваривания кровяной пищи активное тестируемое соединение попадает в организм комара, воздействуя на различные органы и вызывая гибель некоторых из них.
Посчитайте количество погибших комаров и рассчитайте смертность. Оцените влияние исследуемого химиката на репродуктивную систему выживших комаров, введя в камеру чашку для яиц.
Самки комаров используют белки из кровяной муки и откладывают яйца, которые собираются внутри чашки. Подсчитайте количество яиц, оценив снижение плодовитости – яйцекладущей способности.
Высокая смертность и низкая плодовитость соответствуют инсектицидной способности соединения.
Соберите около 150 четырех-пятидневных взрослых самок комаров с помощью аспиратора и перенесите их в отдельную клетку. Удалите источник сахара за 1–24 часа до начала теста на кормление.
Приготовьте в воде 80-миллимолярный стоковый раствор исследуемого состава. Затем последовательно разбавляют его водой для получения растворов рабочего состава нужных концентраций.
Чтобы получить желаемые концентрации, добавьте 40 микролитров каждого разведения к 960 микролитрам дефибринированной крови кролика в 1,5-миллилитровую пробирку и перемешайте с помощью пипетирования. Поместите мембранный фильтр на блок подачи и закройте его резиновым кольцом.
Далее с помощью пипетки передайте 1 миллилитр крови с тестовым раствором через порт подачи, расположенный на обратной стороне питательного блока. Подсоедините блок подачи к нагревательному блоку. Затем аккуратно промокните поверхность мембраны свежеприготовленным 10% раствором молочной кислоты.
Поместите блок кормления в клетку. Накройте клетку темной тканью и дайте комарам покормиться в течение одного часа. После того, как комары накормятся, поместите клетку в холодильник при температуре 4 градуса Цельсия на пять минут, чтобы обезболить комаров. Затем подсчитайте и запишите общее количество комаров в клетке.
Осмотрев брюшную полость, подсчитайте и запишите общее количество полностью и частично откормленных самок комаров. На одну дозу должно быть получено не менее 50 комаров, которых кормят кровью. Удалите всех комаров, которые не поели. Затем перенесите клетку в камеру роста и с помощью таблицы показателей запишите количество мертвых комаров в соответствующие моменты времени.
На 3-й день после кормления кровью поместите чашку с яйцом в клетку на 72 часа. С помощью препарирующего микроскопа подсчитайте общее количество яйцеклеток, полученных за одну обработку.