$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Рекомбинантные аденоассоциированные вирусы, rAAV, генетически модифицированные, безоболочечные, одноцепочечные ДНК-вирусы, являются перспективными терапевтическими носителями генов.
rAAV прикрепляются к рецепторам клеточных мембран-мишеней и подвергаются клатрин-опосредованному эндоцитозу, способствуя ядерной доставке генома rAAV и терапевтической экспрессии генов. Тем не менее, нейтрализующие антитела иммунной системы, направленные против rAAV, связываются со специфическим эпитопом rAAV, препятствуя связыванию клеточной мембраны, клеточному проникновению и переносу генов.
Чтобы обнаружить нейтрализующие антитела против специфических rAAV в сыворотке крови овец, сначала получите соответствующие концентрации разбавленной сыворотки. Добавьте рекомбинантные AAV, экспрессирующие плацентарную щелочную фосфатазу человека, hPLAP, ген. Позволяют нейтрализующим антителам связываться и нейтрализовать AAV.
Перенесите эту смесь в лунки многолуночного планшета, содержащего адгезивную культуру эпителиальных клеток человека. После инкубации AAV подвергаются клеточному эндоцитозу. Трансдуцированные клетки экспрессируют hPLAP, связанный с клеточной мембраной. Однако нейтрализованные AAV не могут проникнуть в клетки.
Выбросьте среду из лунок. Используйте параформальдегид для фиксации клеток. Добавьте предварительно подогретый буфер и нагрейте клетки, чтобы инактивировать эндогенную клеточную щелочную фосфатазу; hPLAP устойчив к инактивации тепла.
Добавьте субстраты hPLAP - бромхлориндолилфосфат, BCIP и нитросиний тетразолиум, NBT. hPLAP дефосфорилирует BCIP, который подвергается димеризации, образуя синий промежуточный продукт. Высвобождаемые ионы водорода восстанавливают NBT, образуя нерастворимый фиолетовый осадок. Изображение для наблюдения за фиолетовыми отложениями, окружающими трансдуцированные клетки.
Меньшая доля фиолетовой области указывает на повышенную концентрацию нейтрализующих AAV антител.
Начните нанесение покрытия на элементы HT1080 с первого дня путем разбавления элементов до концентрации 1 x 105 клеток/мл в предварительно нагретой полной среде DMEM.
Затем засейте 100 микролитров клеток на лунку в прозрачные 96-луночные планшеты с плоским дном до концентрации 1 х 104 клеток на лунку. Инкубируйте планшет при температуре 37 градусов Цельсия с 5% углекислым газом в течение ночи в течение 16-22 часов.
На второй день сгенерируйте серийные разведения образцов сыворотки, представляющие интерес, в микроцентрифужных пробирках объемом 1,5 миллилитра, используя предварительно нагретый полный DMEM.
В каждую пробирку с разведенными образцами сыворотки добавьте 66 микролитров вирусного генома 7,5 х10 6 на микролитр рабочего раствора вируса. Смешайте разведения вируса/сыворотки с помощью пипетирования, а затем поместите пробирки, содержащие смеси вируса/сыворотки, в инкубатор при температуре 37 градусов Цельсия с 5% углекислым газом на 30 минут, чтобы обеспечить потенциальную нейтрализацию.
Через 30 минут нанесите пипеткой по 100 микролитров смеси вируса и сыворотки в каждую лунку на 96-луночный планшет, содержащий 1 x 104 клетки на лунку, затем заверните планшет в фольгу и поместите в инкубатор при температуре 37 градусов Цельсия с 5% углекислым газом на ночь на 16-24 часа.
На третий день отсасывайте среду из лунок 96-луночного планшета с помощью вакуума вытяжного шкафа, не нарушая прилипшие клетки, и добавьте 50 микролитров 4% параформальдегида в каждую лунку. Завернув тарелку в фольгу, оставьте ее на 10 минут при комнатной температуре.
Позже дважды промойте и аспирируйте клетки 200 микролитрами PBS комнатной температуры. После второй промывки нанесите пипеткой по 200 микролитров предварительно подогретого PBS в каждую лунку и заверните пластину в фольгу с последующей инкубацией при температуре 65 градусов Цельсия в течение 90 минут для денатурации эндогенной щелочной фосфатазы.
После инкубации добавьте 50 микролитров свежеприготовленного, растворенного BCIP/NBT в каждую лунку и инкубируйте завернутые пластины при комнатной температуре от 2 до 24 часов. Позже сфотографируйте каждую лунку с помощью объектива с 4-кратным увеличением в камере светового микроскопа, обеспечив последовательное использование одной и той же экспозиции, баланса белого и настроек освещения для всех анализов.