Анализ на персистентность in vitro: метод оценки влияния осмолитов на персистенцию бактерий

0 просмотров4:54 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

При воздействии вредных условий окружающей среды подмножество бактерий переходит в состояние низкой метаболической активности, избегая вредного воздействия. Эти бактерии, называемые персистентами, могут переносить кратковременное воздействие высоких концентраций антибиотиков.

Для изучения влияния осмолитов - малых органических растворенных веществ - на бактериальную персистенцию, во-первых, получают культуру бактериальных клеток в экспоненциальной фазе с ранее существовавшими персистентами ниже предела детекции, суспендированными в средах.

Далее перенесите суспензию в осмолитсодержащие лунки микрочип-планшета. Держите набор лунок без осмолита в качестве контроля. Запечатайте планшет газопроницаемой мембраной, чтобы обеспечить быструю диффузию газа для роста клеток и инкубации.

Осмолиты в среде в соответствующих концентрациях вызывают осмотический стресс, заставляя некоторые клетки перепрограммировать свой клеточный метаболизм с быстрого на медленный рост, образуя персистирующие вещества.

Теперь перенесите обработанные осмолитом и контрольные клетки в планшет для анализа, содержащего антибиотики. Закройте планшет для стойкого анализа и инкубируйте.

В присутствии антибиотиков нормальные клетки подвергаются клеточной гибели, в то время как персистентные клетки, устойчивые к антибиотикам, выживают. Наконец, соберите небольшую часть клеток, последовательно разбавьте буфером и поместите на агаровую пластину без антибиотиков. Инкубируйте тарелку.

При отсутствии антибиотиков персистентные растения возобновляют рост и размножаются, образуя колонии. Посчитайте количество колоний на агаровой пластине.

Большее количество колоний, чем контроль без осмолитов после лечения антибиотиками, свидетельствует о положительном влиянии осмолитов на образование персистентных препаратов.

Начните с подготовки клеточных культур с микрочипами.

Перенесите 250 микролитров элементов экспоненциальной фазы в 25 миллилитров свежей модифицированной среды LB в центрифужной пробирке объемом 50 миллилитров. Затем аккуратно перемешайте клеточную суспензию, чтобы сделать ее однородной.

Перелейте разведенную клеточную суспензию в стерильный 50-миллилитровый резервуар. С помощью многоканальной пипетки перенесите 150 микролитров клеточной суспензии в каждую лунку микрочиповой пластины, содержащей различные химические вещества. Микрочипы также могут быть сгенерированы вручную, следуя методу, описанному в текстовой рукописи.

Накройте планшет микрочипа газопроницаемой уплотнительной мембраной и инкубируйте его в орбитальном вибростенде при температуре 37 градусов Цельсия и 250 оборотах в минуту в течение 24 часов.

Для изготовления пробирных планшетов Persister приготовьте 25 миллилитров модифицированной среды LB, содержащей 5 микрограммов на миллилитр офлоксацина в 50-миллилитровой центрифужной пробирке, и перенесите эту среду в стерильный резервуар

.

Перелейте 190 микролитров модифицированной среды LB в каждую лунку универсального 96-луночного планшета с плоским дном. После 24-часовой инкубации извлеките микрочип из шейкера и перенесите 10 микролитров клеточных культур из микрочипа в лунки аналитической пластины Persister, содержащей модифицированную среду LB с офлоксацином.

Возьмите 10 микролитров клеточных суспензий из аналитической пластины Persister и последовательно разведите ее 3 раза в 290 микролитрах раствора PBS, используя 96-луночный планшет с круглым дном, и многоканальную пипетку. Затем нанесите 10 микролитров всех серийно разведенных клеточных суспензий на пластины свежего агара без антибиотиков.

Накройте планшет Persister газопроницаемой герметизирующей мембраной и инкубируйте его в орбитальном вибростенде при температуре 37 градусов Цельсия и 250 оборотах в минуту в течение шести часов.

После 6-часовой инкубации повторите серийное разведение и мажущие выделения на агаровых пластинах. Инкубируйте агаровые пластины в течение 16 часов при температуре 37 градусов Цельсия, затем подсчитайте колониеобразующие единицы, или КОЕ. Используйте уровни КОЕ до и через шесть часов после лечения антибиотиками, чтобы рассчитать персистентную фракцию в каждой лунке.

Подсчет КОЕ перед обработкой OFX также помогает оценить влияние осмолитов на жизнеспособность E. coli.

09:09

Высокая пропускная способность, в режиме реального времени, двойного считывания Тестирование внутриклеточного антимикробной активности и эукариотической клетки цитотоксичность

Похожие видео

0 Просмотры

09:57

Система для эффективности и цитотоксичности скрининга ингибиторов Таргетинг внутриклеточных Микобактерии туберкулеза

Похожие видео

0 Просмотры

10:29

Высокая пропускная способность Совместимость анализа для оценки эффективности против наркотиков пассировать макрофагов Микобактерии туберкулеза

Похожие видео

0 Просмотры

05:02

Микрофлюидная покадровая микроскопия для изучения персистенции антибиотиков у бактерий

Похожие видео

0 Просмотры

02:57

Assessing Intracellular Bacterial Persistence and Antibiotic Resistance in a Mouse Model

Похожие видео

0 Просмотры

03:37

Анализ замедленного ингибирования роста для оценки действия антимикробных соединений, полученных из бактерий

Похожие видео

0 Просмотры

09:20

Исследование действия пробиотиков на пневмококковой колонизации Использование Экстракорпоральное Соблюдение Анализ

Похожие видео

0 Просмотры

07:47

ScanLag: Высокая пропускная Количественная оценка колонии роста и время запаздывания

Похожие видео

0 Просмотры

07:42

Отложенный роста Анализ ингибирования для количественной оценки влияния бактерий, полученных Противомикробные по конкуренции

Похожие видео

0 Просмотры

06:38

Использование Soft-агара Техника для скрининга бактериально Производимые ингибирующие

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 15 августа 2026