$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
При некоторых нейродегенеративных расстройствах ассоциированный с заболеванием белок содержит расширенный полиглутамин, polyQ, тракт — цепочку последовательных остатков глутамина — и имеет аберрантную конформацию. Нарушенная конформация дестабилизирует белковый гомеостаз, вызывая накопление белка и образование токсических агрегатов, что приводит к дисфункции и гибели нейронов.
Для скрининга защитной способности испытуемого соединения в снижении протеотоксичности, связанной с агрегацией polyQ, получают суспензию трансгенных личинок Caenorhabditis elegans, экспрессирующих флуоресцентно помеченные белки polyQ в мышечных клетках стенки тела.
Возьмите многолуночную пластину, содержащую среду, дополненную бактериальной пищей. Добавьте исследуемый состав в один набор лунок. Переложите личинок в многолуночную пластину. Закройте пластину герметиком, чтобы предотвратить обезвоживание среды и микробное загрязнение. Инкубируют, позволяя личинкам вырасти во взрослых особей.
Во время развития, по мере старения нематоды, белки polyQ постепенно накапливаются в мышечных клетках и образуют агрегаты.
Если тестируемое соединение присутствует в среде, оно проникает в мышечные клетки и, в зависимости от своей защитной способности, может оказывать антиполиQ-агрегационный эффект, подавляя и задерживая полиQ-агрегацию.
Соберите урожай взрослых нематод и центрифугируйте. Повторно суспендируйте гранулированных нематод. Переложите в многолуночный планшет. Обездвижите нематод с помощью азида натрия.
Используя флуоресцентное устройство с высоким разрешением, подсчитайте флуоресцентные точки, представляющие собой полиQ-агрегаты, на нематоду.
Более низкое среднее количество агрегатов polyQ при обработке, чем в контрольных лунках, свидетельствует о более высокой защитной способности испытуемого соединения в снижении протеотоксичности, связанной с агрегацией polyQ.
Начните с переноса от 300 до 500 синхронизированных личинок L1 нематод AM141 в каждую лунку 48-луночного планшета с 500 микролитрами S-среды, содержащей штамм OP50 кишечной палочки, и пятью миллиграммами на миллилитр астрагалана. Запечатайте пластину парапленкой и инкубируйте ее при температуре 20 градусов Цельсия и 120 оборотах в минуту в течение желаемых временных интервалов.
Перенесите нематод в стерильную микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 миллилитра и трижды промойте буфером M9 центрифугированием, чтобы удалить оставшиеся клетки OP50. Затем ресуспендируйте нематод AM141 в буфере M9.
Теперь перенесите от 10 до 15 нематод в каждую лунку в 384-луночный планшет, установив 10 повторяющихся лунок для каждой обработки, и добавьте 10 микролитров 200 миллимолярного азида натрия в каждую лунку, чтобы парализовать нематод, позволив им осесть на дно.
Поместите пластину в систему визуализации с высоким содержанием жидкости для получения флуоресцентных изображений. Откройте программу для получения изображений и настройте параметры, указанные в рукописи текста. Проанализируйте данные изображения, открыв окно «Просмотреть данные пластины» и выбрав «Тестовую пластину» для анализа изображения.
Дважды щелкните по тестовой лунке, чтобы отобразить ее изображение. Затем выберите «Подсчет ядер» в качестве метода анализа и нажмите на кнопку «Настроить параметры». Определите исходное изображение из канала FITC и выберите «Стандартный алгоритм».
Установите параметры анализа изображений, как описано в текстовой рукописи, и протестируйте их для оптимизации метода анализа. Сохраните настройки и запустите анализ по всем скважинам. Экспортируйте «Общее количество ядер» как общее количество агрегатов Q40::YFP в каждой скважине.
Подсчитайте количество нематод в каждой скважине и рассчитайте среднее количество агрегатов Q40::YFP на нематоду в каждой группе. Затем рассчитайте индекс торможения.