$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Некоторые наследственные нейродегенеративные расстройства включают в себя белки с длинной цепочкой остатков глютамина, называемые полиглутамином, polyQ, трактом. Эти структурно нестабильные, склонные к неправильному сворачиванию белки в конечном итоге накапливаются, образуя токсичные агрегаты, негативно влияя на функцию и выживание нейронов.
Чтобы оценить защитный потенциал исследуемого соединения на выживаемость нейронов против polyQ-опосредованной нейротоксичности, начните с суспензии трансгенных личинок Caenorhabditis elegans, экспрессирующих флуоресцентные и полиQ-белки в ASH — парных хемосенсорных — нейронах.
Переложите в лунки многолуночный планшет, содержащий среду и бактериальный источник пищи. Добавьте тестовый состав в один набор лунок. Запечатайте пластину, сводя к минимуму обезвоживание и загрязнение среды. Инкубировать.
Во время развития червей белки polyQ образуют агрегаты в нейронах ASH, что приводит к нейротоксичности, связанной с агрегацией, и влияет на выживание нейронов.
Если тестируемое соединение присутствует, оно проникает в нейроны и, основываясь на своей нейропротекторной способности, может подавлять агрегацию белка polyQ, смягчая связанную с этим нейротоксичность и улучшая выживаемость нейронов.
Соберите взрослых червей и центрифугуйте. Снова суспендируйте червей в подходящем буфере и переложите на агарозную подушечку с подходящим химическим веществом для иммобилизации.
Используя флуоресцентный микроскоп, визуализируйте нейроны ASH для обнаружения флуоресцентных белков, индикатора выживания нейронов.
Более высокая флуоресценция при лечении, чем в контрольных лунках, предполагает повышенную выживаемость нейронов, что указывает на нейропротекторный потенциал тестируемого соединения в подавлении агрегации polyQ и связанной с ней нейротоксичности.
Для подготовки нематод для анализа нейротоксичности polyQ в каждую лунку 48-луночного планшета переносят от 300 до 500 синхронизированных личинок L1 нематод HA759 с 500 микролитрами S-среды, содержащей штамм OP50 кишечной палочки и 5 миллиграммов на миллилитр астрагалана. После запечатывания планшетов инкубировать, собрать и повторно суспендировать нематод в буфере M9, как показано на рисунке.
Теперь приготовьте агарозную подушечку, добавив 2 грамма агарозы в 100 миллилитров буфера M9, и нагрейте раствор в микроволновой печи почти до кипения. Вынесите 0,5 миллилитра расплавленной агарозы на центр предметного стекла для микроскопии толщиной 1 миллиметр, помещенного между двумя кусочками стеклянных пластин толщиной 2 миллиметра, накрыв еще одним предметным стеклом вертикально. Аккуратно снимите верхнее стекло, как только агароза остынет и застынет.
Начните анализ выживаемости нейронов ASH, добавив каплю 20 миллимолярного азида натрия на агарозную прокладку, а затем перенесите в каплю от 15 до 20 нематод HA759 для их иммобилизации. Аккуратно накройте нематод крышкой.
Теперь держите предметное стекло под флуоресцентным микроскопом, оснащенным цифровой камерой. Выберите объектив с 40-кратным увеличением и фильтр FITC для обнаружения GFP-положительных нейронов ASH в области головы нематод.
Выберите более 50 нематод в каждой группе случайным образом, чтобы подсчитать количество нематод с GFP-мечеными двусторонними нейронами ASH в области головы, а затем рассчитать выживаемость нейронов ASH.