$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Цифровая полимеразная цепная реакция — или dPCR — полезна для количественного определения однонуклеотидных вариантов — или SNV — мутации, при которой замена одного нуклеотида в определенной позиции в геноме создает две нуклеотидные вариации или аллели.
Чтобы начать количественное определение с помощью метода ПЦР «чип в пробирке», возьмите образец ДНК, содержащий SNV — мутантный аллель и соответствующий аллель дикого типа. Добавьте смесь, содержащую термостабильный фермент ДНК-полимеразу, dNTP и праймеры.
Затем добавьте аллель-специфичные олигонуклеотидные зонды, помеченные репортерами разноцветной флуоресценции, чтобы различать аллели, и молекулу-гаситель. Близость гасителя к репортеру подавляет его флуоресценцию.
Разделите раствор на реакционные камеры микрофлюидного чипа. Каждая камера, содержащая аллель, служит самостоятельным реакционным сосудом.
Поместите трубку с чипом внутрь термоамплификатора, и запустите реакцию. При высокой температуре двухцепочечная ДНК денатурируется на одноцепочечные. Понизьте температуру для отжига грунтов и олигонуклеотидных зондов до их комплементарных областей.
При соответствующей температуре удлинения ДНК-полимераза удлиняет праймеры и расщепляет зонд. Расстояние от гасителя позволяет репортеру излучать флуоресценцию.
Считывание разноцветных флуоресцентных сигналов и создание графика положения для обнаружения камер, содержащих аллели.
Чтобы определить частоту мутантного аллеля — фракции вариантного аллеля — вычислите соотношение камер, содержащих мутантный и дикий тип
.
Добавьте ранее разработанные праймеры, зонды и геномную ДНК в новую полоску из 8 пробирок, чтобы получить общий объем 15 микролитров. Пипеткой вверх и вниз перемешивайте.
Добавьте загрузочную платформу на стружку, встроенную в свежую 8-трубную полосу, а затем поместите трубную полосу в автозагрузчик. Убедитесь, что между стружкой и погрузочной платформой есть контакт. Затем поместите загрузочный слайдер на платформу и с помощью стопора удерживайте слайдер от погрузчика. Нанесите пипеткой 15 микролитров ПЦР-смеси возле кончика ползунка, а затем, нажав кнопку загрузчика, запустите загрузчик на 1 минуту.
Снимите трубную полосу с погрузчика после пробега и поместите ее в усилитель герметизации. Осторожно надавите на горную крышку и край верхней крышки. Запустите усилитель герметизации примерно на 2 минуты. Если герметизация неполная, о чем свидетельствует лужа жидкости, повторите прогон еще минуту.
Добавьте в трубки 230 микролитров герметизирующей жидкости. Поместите полоску пробирки в термоамплификатор и запустите ПЦР, как описано в протоколе. Если наблюдается неравномерное распределение положительных разделов, отрегулируйте температуру или продолжительность ПЦР.
Чтобы обнаружить и проанализировать интенсивность флуоресценции продуктов ПЦР, поместите полоску пробирки на приспособление для обнаружения и добавьте 6 миллилитров дистиллированной воды. Удалите все видимые пузырьки воздуха с помощью наконечника для дозатора.
Загрузите приспособление в детектор. В программном обеспечении для обнаружения выберите вкладки «Флуоресценция», «Эксперимент», а затем «Образец/NTC» и нажмите кнопку «Выполнить», чтобы начать запуск. После завершения прогона подтвердите график положения, гистограмму и 2D-диаграмму рассеяния.
Чтобы собрать продукт ПЦР, удалите герметизирующую жидкость из пробирки. Добавьте 100 микролитров TE-буфера и энергично ворксируйте в течение 30 секунд. Кратковременно центрифугируйте пробирки в настольной центрифуге и действуйте, как описано в текстовом протоколе, до завершения сбора продукта ПЦР.