Количественная проточная цитометрия для изучения меченых белково-фосфолипидных везикулярных взаимодействий

0 просмотров2:43 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Белок-фосфолипидные взаимодействия на клеточной мембране имеют решающее значение для регуляции нескольких клеточных процессов.

Чтобы обнаружить целевые белок-фосфолипидные взаимодействия in vitro с помощью количественной проточной цитометрии, возьмите пробирку, содержащую в буфере желаемую концентрацию имитации клеточной мембраны — микронных меченых липофильными красителями фосфолипидных везикул.

Добавьте в раствор соответствующую концентрацию различных флуоресцентно меченных целевых белков.

Введите суспензию в проточный цитометр. Установите параметры жидкостной системы на низкую скорость потока, чтобы обеспечить достаточное время для белок-фосфолипидных взаимодействий.

По мере того, как флуоресцентно меченые белки и фосфолипидные везикулы взаимодействуют в проточном канале, концентрация белков, связанных с везикулами, увеличивается.

Когда эти комплексы проходят через лазерные лучи от определенных флуоресцентных каналов, обеспечивающих соответствующие длины волн, они возбуждаются. Эти возбужденные белки и фосфолипидные везикулы в комплексе при релаксации до основного состояния излучают соответствующие флуоресцентные сигналы, которые улавливаются соответствующими детекторами.

Обнаружение высокой средней интенсивности флуоресценции белков свидетельствует о связывании белка с фосфолипидными везикулами.

Эксперименты по кинетическому связыванию начинают с разбавления фосфолипидных везикул в буфере Тайроде до концентрации 1 микромоль и общего объема 250 микролитров. Затем смешайте меченный флуоресцентными материалами фактор свертывания X или fX-fd в концентрации 500 наномоляров с фосфолипидными везикулами в соотношении 1:1, чтобы получить общий объем 500 микролитров.

Немедленно введите 500 микролитров смешанной суспензии в проточный цитометр со скоростью потока с длиной волны возбуждения 488 нм и эмиссионным фильтром 585 нм с шириной 42 мкм для канала FL2.

Затем измерьте среднюю флуоресценцию в канале FL4 с возбуждением на 633 нм и эмиссионном фильтре на 660 нм с шириной 20. Когда насыщение связывания достигнуто, быстро разбавьте образец в 20 раз буфером Тайроде и контролируйте диссоциацию до тех пор, пока не будет достигнута базовая флуоресценция или плато.

11:22

С использованием трехцветной сингл молекула лад для изучения корреляции взаимодействий протеина

Похожие видео

0 Просмотры

11:10

Моющее бесплатно сверхскоростной воссоздание мембранных белков в липидных бислоев с помощью дополнительных заряженные Proteoliposomes Fusogenic.

Похожие видео

0 Просмотры

09:12

Характеристика человека Моноцит подмножеств по цельной крови Cytometry анализ потока

Похожие видео

0 Просмотры

07:33

Липидов везикул-опосредованной аффинной хроматографии с использованием магнитных Активированный сортировки клеток (LIMACS): новый метод для анализа Белково-липидные взаимодействия

Похожие видео

0 Просмотры

11:11

Проточной цитометрии бимолекулярного флуоресценции Комплементация: Высокая пропускная способность Количественный метод изучения взаимодействия белок-белок

Похожие видео

0 Просмотры

09:39

Методы анализа внеклеточной везикул с использованием проточной цитометрии

Похожие видео

0 Просмотры

10:52

Радиоактивной и Количественная клеточном уровнях фосфоинозитидов с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии в сочетании-Flow мерцаний

Похожие видео

0 Просмотры

11:32

Определение относительной клеточной поверхности и Total экспрессии рекомбинантных ионных каналов с помощью проточной цитометрии

Похожие видео

0 Просмотры

10:58

PIP-on-a-chip: безвредное исследование взаимодействия протеин-фосфоинозитид

Похожие видео

0 Просмотры

08:38

Фосфоресцентный проточной цитометрии с люминесцентные клеток штриховое кодирование для сигнализации биомаркер обнаружение и анализ отдельной ячейки

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 1 августа 2026