$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Химерный онкогенный гибридный белок содержит N-концевой домен низкой сложности, LCD, РНК-связывающего белка, слитого с ДНК-связывающим доменом, DBD, белка-фактора транскрипции. Эти белки образуют белковый конденсат, который рекрутирует РНК-полимеразу-II и управляет онкогенезом.
Чтобы визуализировать сборку белковых конденсатов с помощью одномолекулярной визуализации, начните с проточной ячейки ДНК — предметного стекла из плавленого кварцевого стекла, оснащенного входными и выходными отверстиями для инъекций. Поверхность проточной ячейки покрыта биотинилированным липидным бислоем для защиты поверхности и изготовлена с зигзагообразным барьером.
Подключите его к микрофлюидной системе. Введите раствор стрептавидина, который связывается с его лигандом с высоким сродством связывания, биотином, на липидном слое. Введите меченную биотином двухцепочечную лямбда-ДНК, которая содержит множественные повторы последовательностей, связывающих слитые белки. Стрептавидин липидного бислоя связывается с биотином ДНК и прикрепляет ДНК лямбда к бислою.
Промойте подходящим буфером. Гидродинамическая сила его потока выпрямляет закрепленные молекулы ДНК, позволяя им висеть как занавес ДНК над барьерами.
Поместите проточную ячейку под флуоресцентный микроскоп. Введите раствор ДНК-связывающих зеленых флуорофоров. Затем введите раствор гибридного белка, помеченный к связывающему белки пурпурному флуорофору через его домен LCD, и инкубируйте.
Меченые гибридные белки связываются с целевой последовательностью на лямбда-ДНК, образуя конденсаты по всей длине ДНК. При возбуждении флуорофоры, связанные с ДНК и белками, флуоресцируют.
Слитые белковые конденсаты выглядят как пурпурный цвет на двухцепочечной ДНК, меченной зелеными флуоресцентными лампами.
Чтобы изобразить образование конденсации EWS-FLI1 на занавесках ДНК, откройте программное обеспечение для визуализации, найдите и отметьте положения девяти зигзагообразных узоров в светлом поле. Затем включите поток со скоростью 0,2 миллилитра в минуту, чтобы окрашивать ДНК двухцепочечным красителем ДНК на 10 минут.
Затем разбавляют белок mCherry-EWS-FLI1 буфером для визуализации в концентрации 100 наномолей и 100 микролитров. Затем загрузите образец белка через клапан с помощью стеклянного шприца объемом 100 микролитров, и измените скорость потока на 0,4 миллилитра в минуту.
После включения 488-нанометрового лазера предварительно просканируйте каждый участок, чтобы проверить состояние распределения ДНК, и выберите участок, в котором молекулы ДНК распределяются равномерно. Затем установите мощность лазера на 10% для 488-нанометрового лазера и 20% для 561-нанометрового лазера и с помощью измерителя мощности измерьте реальную мощность лазера вблизи призмы.
Начните получать изображения с двухсекундным интервалом с помощью лазеров длиной 488 и 561 нанометр одновременно. Затем переключите клапан из ручного режима в режим впрыска, чтобы буфер визуализации промыл образец белка в проточную ячейку через 60 секунд.
Чтобы извлечь свободный EWS-FLI1, продолжайте промывать проточную ячейку буфером визуализации в течение пяти минут, включив только 561-нанометровый лазер. Затем остановите поток и инкубируйте при температуре 37 градусов Цельсия в течение 10 минут.
Через 10 минут включите поток со скоростью 0,4 миллилитра в минуту, чтобы ДНК расширилась, и получайте изображения с интервалом в две секунды между различными кадрами для получения высокопроизводительных данных об образовании конденсата EWS-FLI1.