JoVE Encyclopedia of Experiments
Иммунология
0 просмотров • 6:02 мин • July 8th, 2025
Пейеровы пластыри, ПП, агрегаты организованных лимфоидных тканей в стенке тонкой кишки, содержат иммунные клетки, включая В-лимфоциты, Т-лимфоциты, дендритные клетки и макрофаги.
Чтобы выделить лимфоциты из ПП мыши, начните с усыпленной мыши. Надрезать брюшную стенку, обнажая брюшную полость. Найдите слепую кишку. Рассеките илеоцекальное соединение, чтобы отделить слепую кишку от тонкой кишки.
Иссеките брыжейку и разрежьте тонкую кишку в области двенадцатиперстной кишки, чтобы удалить тонкую кишку из брюшной полости. Поместите тонкую кишку в многолуночную пластину, содержащую охлажденную среду, и промойте, чтобы удалить мусор.
Расположите тонкую кишку брыжеечной стороной вниз и увлажните средой для поддержания гидратации тканей. Определите ПП — белые многодольчатые агрегаты на антибрыжеечной стороне стенки кишечника.
Тщательно иссекайте ПП, исключая окружающую кишечную ткань. Переложите в пробирку со средой. Инкубируют при постоянном перемешивании. Эта стадия перемешивания отделяет слизь, клеточный мусор и любые фекальные массы от ПП, тем самым улучшая восстановление лимфоцитов ПП.
Далее переложите ткань в клеточное ситечко с подходящим размером ячеек. Аккуратно разрушайте ПП и высвобождайте клетки. Промойте средой через ситечко до получения суспензии одноклеточных лимфоцитов. Центрифугируйте суспензию при низкой температуре для поддержания стабильности клетки.
Ресуспендируют лимфоциты в среду, и используют для дальнейшего анализа.
Начните с того, что поместите мышь в положение лежа на спине и простерилизуйте брюшную полость с помощью 70% этанола. Сделайте разрез живота по средней линии через кожу и брюшину от лобка до грудной клетки, чтобы открыть брюшную полость и найти слепую кишку и илеоцекальное соединение.
Сделайте разрез как можно дистальнее, в месте соединения отделите тонкую кишку от слепой кишки, а брыжейку разрежьте ножницами, чтобы аккуратно удалить всю тонкую кишку вплоть до пилорического сфинктера.
Отрежьте место соединения между привратником и двенадцатиперстной кишкой, чтобы полностью отделить тонкую кишку от брюшной полости, и поместите изолированную тонкую кишку в одну лунку шестилуночного планшета, содержащую холодную среду RPMI, дополненную 10% фетальной сывороткой крупного рогатого скота или FBS на льду. Затем аккуратно взбалтывайте ткани вручную, пока все сегменты не будут погружены в холодную среду.
Когда все кишки будут собраны, используйте щипцы, чтобы захватить брыжеечный жир с одного края кишечника и поместите образец брыжеечной стороной вниз на бумажное полотенце. Смочите весь кишечный сегмент RPMI плюс 10% FBS, чтобы избежать обезвоживания и липкости тканей, и найдите пейеровы пятна, которые выглядят как белые многодольчатые агрегаты с формой, похожей на цветную капусту, на антибрыжеечной стороне стенки кишечника.
Чтобы собрать пластыри Пейера, используйте изогнутые хирургические ножницы изогнутой стороной вверх, чтобы аккуратно вырезать каждый пластырь от его дистальных и проксимальных границ, стараясь исключить окружающую кишечную ткань, и поместите пластыри Пейера в отдельные лунки 12-луночного планшета, содержащего ледяной RPMI плюс 10% FBS, на льду по мере их сбора.
Когда все пластыри будут получены, с помощью ножниц отрежьте кончик наконечника микропипетки объемом 1 миллилитр так, чтобы его диаметр был достаточно большим для аспирации отдельных пейеровских пластырей, и перенесите пейеровы пластыри в 150-миллилитровую коническую трубку на мышь, содержащую 25 миллилитров 37 градусов Цельсия RPMI плюс 10% FBS.
Затем поместите пробирки в орбитальный шейкер при температуре 37 градусов Цельсия с непрерывным перемешиванием со скоростью от 125 до 150 об/мин в течение 10 минут. В конце перемешивания перенесите пейеровы пластыри на 140-микрометровый клеточный фильтр для каждой мыши и используйте резиновый конец 110-миллилитрового поршня шприца для каждого животного, чтобы аккуратно разбить пейеровы пластыри через сетку на отдельные 50-миллилитровые конические трубки.
Промойте фильтры 15-20 миллилитрами холодного RPMI плюс 10% FBS и соберите клетки центрифугированием. После тщательного удаления надосадочной жидкости повторно суспендируйте клетки в соотношении примерно 1 x 107 клеток на миллилитр RPMI плюс 10% концентрация FBS для подсчета. Затем перенесите от 2 до 2,5 x 106 ячеек на 200 микролитров среды, в каждую лунку с круглым дном на 96 лунок и гранулируйте ячейки центрифугированием.
В данной статье подробно описывается метод выделения лимфоцитов из пейеровых бляшек (ПБ) тонкого кишечника мышей. Процедура включает тщательное препарирование и обработку тканей кишечника для получения жизнеспособной клеточной суспензии для последующего анализа.
Выделение лимфоцитов из пейеровых бляшек мышей позволяет снизить механистические риски при исследовании мишеней в ассоциированной с кишечником лимфоидной ткани (GALT) в области иммунологии и разработки слизистых вакцин. Данный протокол способствует валидации мишеней, обеспечивая воспроизводимый источник первичных B- и T-лимфоцитов для функциональных анализов, что уменьшает биологическую неопределенность на ранних этапах поиска. Метод повышает прогностическую достоверность доклинических моделей, гарантируя получение жизнеспособных, свободных от контаминации клеточных суспензий для последующего анализа.
Протокол выделения лимфоцитов интегрирован в непрерывный процесс исследований — от идентификации мишени до доклинической валидации, обеспечивая поддержку циклов разработки иммуноориентированных лекарственных препаратов.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026