Метод in vitro для дифференцировки мегакариоцитов и образования тромбоцитов

0 просмотров5:07 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Мегакариоциты — это большие многоядерные клетки, которые дают начало тромбоцитам, необходимым для свертывания крови.

Для получения тромбоцитов in vitro берут суспензию гемопоэтических стволовых и прогениторных клеток, ГСКС, полученных из пуповинной крови человека.

Добавьте тромбопоэтин, и инкубируйте в физиологических условиях. Тромбопоэтин связывается со своим рецептором на ГСКХ, запуская сигнальные события, которые приводят к дифференцировке ГСКХ в незрелые мегакариоциты.

Незрелые клетки подвергаются процессу созревания с образованием зрелых мегакариоцитов. Созревшие клетки имеют большие размеры и содержат цитоплазматические секреторные гранулы. Они обладают многолопастным полиплоидным ядром и инвагинированной мембранной системой в цитоплазме.

Созревшие мегакариоциты продуцируют длинные, тонкие цитоплазматические расширения — протромбоциты. Протромбоциты — множественные отеки размером с тромбоциты, связанные тонкими цитоплазматическими мостиками — высвобождаются в среду.

Цитоплазматические мостики разрываются, вызывая высвобождение отдельных тромбоцитов. Центрифуга для получения тромбоцитов в виде гранул. Выбросьте надосадочную жидкость и повторно суспендируйте гранулу в буфере, содержащем аденозиндифосфат — для активации тромбоцитов — и флуоресцентно меченные антитела — для идентификации активированных тромбоцитов.

Аденозиндифосфат связывается со специфическими рецепторами, связанными с G-белком, на тромбоцитах. Связывание инициирует сигнальный каскад, приводящий к активации тромбоцитов. Активация индуцирует внутриклеточную сигнализацию, которая активирует интегриновый комплекс на мембране тромбоцитов. Флуоресцентно меченые антитела связываются с активированным комплексом.

Анализируйте клетки с помощью проточной цитометрии. Наличие специфического для антител флуоресцентного сигнала указывает на активированные тромбоциты.

Для дифференцировки мегакариоцитов затравливают 5 x 105 CD34-положительных клеток на миллилитр в 2 миллилитрах бессывороточной среды, с добавлением рекомбинантного человеческого тромбопоэтина на лунку, в 12-луночный планшет для их инкубации при 37 градусах Цельсия и 5% углекислого газа в увлажненной атмосфере.

В соответствующие моменты времени мониторинга дифференцировки собирайте клетки из двух-трех лунок в каждой временной точке, не повреждая клетки в других лунках, и окрашивайте собранные клетки антителами против CD41 и анти-CD42a для определения процентного соотношения зрелых мегакариоцитов в культурах.

Для микроскопической визуализации маркеров клеточной поверхности промойте собранные клетки в 1 миллилитре разделительного буфера и повторно суспендируйте гранулу в 100 микролитрах свежего буфера. С помощью цитоспина поместите клетки на предметное стекло и прикрепите клетки к предметному стеклу с помощью 30-секундного погружения в метанол. После сушки на воздухе пометьте ячейки 20 микролитрами монтажной среды, дополненной DAPI, и накройте ячейки покровным стеклом для визуализации с помощью флуоресцентной микроскопии.

Для подсчета протромбоцитов собирают клетки на 8 или 9 день дифференцировки и засевают собранные клетки из расчета 1 x 104 клеток на 200 микролитров свежей бессывороточной среды с добавлением рекомбинантного человеческого тромбопоэтина на лунку в 48-луночном планшете. Через 5 дней при 37 градусах Цельсия и 5% углекислом газе подсчитайте количество мегакариоцитов, содержащих протромбоциты, в лунке на микроскопе с инвертированным светом, используя объектив 10 или 20 раз.

Чтобы проанализировать активацию тромбоцитов, на 14 или 15 день посева аккуратно перемешайте клетки с помощью пастеровской пипетки и соберите 100 микролитров клеток. Добавьте в клетки 1 миллилитр буфера Tyrode, и гранулируйте их центрифугированием. Соберите надосадочную жидкость для центрифугирования, чтобы гранулировать частицы размером с тромбоциты, и повторно суспендируйте частицы в 100 микролитрах свежего буфера Tyrode. Затем пометьте частицы антителом против PAC-1. Активируйте их аденозиндифосфатом в течение 20 минут при комнатной температуре, и проанализируйте процент положительных событий PAC-1 с помощью проточной цитометрии.

08:15

На месте Исследование мышиного мегакариопоэтиса с помощью просвечивающих электронных микроскопий

Похожие видео

0 Просмотры

05:58

Динамика образования проплатлетов эксплантов костного мозга мыши

Похожие видео

0 Просмотры

07:58

В городе Vivo Двухфотонная визуализация мегакариоцитов и проплацелетов в костном мозге черепа мыши

Похожие видео

0 Просмотры

09:46

Мегакариоцитов дифференциации и образование тромбоцитов от человека пуповинной крови производные CD34 клетки+

Похожие видео

0 Просмотры

10:25

Панмиелоидная дифференциация крови человека, полученная CD34- гематопоиетические стволовые и преддесятинные клетки

Похожие видео

0 Просмотры

10:30

Выделение прародителей мегакариоцитов мыши

Похожие видео

0 Просмотры

06:57

Клетки CD34+ из лейкополетных фильтров как источник клеток для изучения дифференцировки мегакариоцитов и образования тромбоцитов

Похожие видео

0 Просмотры

07:53

Культура мегакариоцитов в 3D-гидрогеле на основе метилцеллюлозы для улучшения созревания клеток и изучения влияния жесткости и удержания

Похожие видео

0 Просмотры

14:30

Иммунофенотипирование и сортировка клеток человеческих МК из первичных источников человека или дифференцированных in vitro от кроветворных прародителей

Похожие видео

0 Просмотры

09:12

In Vitro Модель эмбрионального сосуда человека на чипе для изучения механобиологии развития

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 15 августа 2026