$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Для получения эмигрантов тимуса, полученных из iPSC, iTE из незрелых Т-клеток в 3D-системе культивирования органов тимуса, берут дезоксигуанозин, обработанные dGUO, фетальные доли тимуса мышей в подходящих средах.
dGUO проникает в среду тимуса и разрушает эндогенные лимфоциты тимуса, предотвращая их интерференцию с незрелыми Т-клетками, полученными из iPSC, во время совместного культивирования.
Сделайте глубокий разрез в центре каждой доли тимуса. Перенесите доли в чашку для свежей культуры, содержащую среду с добавлением факторов роста фактора стволовых клеток, лиганда FLT3 и интерлейкина-7.
Пипеткой нагнетайте
среду, содержащую доли тимуса, в лунки 3D-планшета для культивирования. Добавьте незрелые Т-клетки, полученные из iPSC. Инкубировать. Т-клетки мигрируют в доли тимуса через разрез.
В среде тимуса факторы роста FLT3 лиганд и IL-7 связываются со своими соответствующими рецепторами на незрелых Т-клетках, что приводит к активации факторов транскрипции и экспрессии определенных генов.
Следовательно, незрелые Т-клетки претерпевают ряд изменений и приобретают определенные характеристики, в конечном итоге созревая в CD8αβ+ Т-клетки, которые экспрессируют молекулы CD8, Т-клеточные рецепторы и молекулы MHC класса I на своей поверхности.
Удалите незрелые Т-клетки, которые не смогли мигрировать в доли.
Зрелые iTE мигрируют из долей тимуса, которые можно визуализировать в виде галообразного узора, окружающего доли под световым микроскопом.
На 7 день лечения dGUO достаньте четыре новые 10-сантиметровые тарелки. Заполните каждую посуду миллилитрами готовой среды. Перенесите все нитроцеллюлозные мембраны с долями тимуса в одну 10-сантиметровую посуду. С помощью щипцов отделите отдельные доли от мембраны, позволяя погрузить их в среду.
Инкубируйте доли в течение 1 часа при комнатной температуре. Затем переложите доли тимуса в новую 10-сантиметровую посуду с готовой средой и выдерживайте в течение 1 часа при комнатной температуре. Повторите этот перенос и инкубацию еще два раза.
С помощью щипцов прикрепите доли тимуса к чашке, в то время как другой рукой сделайте разрез глубиной от 100 до 200 микрометров в центре и удлините половину диаметра доли, чтобы облегчить миграцию предшественника Т-клеток в долю.
Перенесите доли тимуса в новую 10-сантиметровую чашку, заполненную средой для полной дифференцировки. При использовании 3D-планшетов для культивирования с сетками нижнего и верхнего уровня заполните обе сетки стерильным PBS, чтобы предотвратить испарение и высыхание висящих капель.
Затем перенесите 30 микролитров полной среды, содержащей одну обработанную dGUO долю тимуса, в каждую лунку 3D-планшета для культивирования. Соберите неадгезивные клетки линии Т из совместной культуры OP9/DLL1 и повторно суспендируйте клетки при плотности от 2000 до 5000 клеток линии Т-клеток на 20 микролитров среды. Добавьте 20 микролитров суспензии клеток Т-линии в каждую долю тимуса в 3D-культуральной пластине. Инкубировать в течение ночи при температуре 37 градусов Цельсия с 5% углекислым газом.
На следующий день установите дозатор P200 на 30 микролитров. Пипетируйте среду в каждой лунке вверх и вниз несколько раз, чтобы удалить все клетки, окружающие доли тимуса. Затем отсасывайте среду из каждой лунки, и замените ее 30 микролитрами готовой среды. Повторите этот процесс — пипетирование, удаление и замена среды — от 5 до 7 раз, чтобы удалить лишние незрелые Т-клетки, которые не мигрируют в доли.
Продолжайте инкубацию лепестков, ежедневно меняя от 25 до 30 микролитров среды. На 4 или 5 день используйте световую микроскопию, чтобы подтвердить образование ореола из иммигрантов тимуса, полученных из iPSC, вокруг долей. Ежедневно собирайте iTE с помощью пипетирования в среде без прерывания доли. Меняйте носители каждый день и продолжайте сбор примерно до 12 дней.
Собранные iTE готовы к использованию для молекулярного анализа или экспериментов по трансплантации in vivo.