Метод выделения первичных тучных клеток из брюшинной полости мыши

0 просмотров4:17 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Тучные клетки — белые кровяные тельца, содержащие цитоплазматические гранулы, заполненные медиаторами воспаления — играют важную роль во врожденных и адаптивных иммунных реакциях.

Чтобы изолировать тучные клетки соединительнотканного типа из брюшной полости — заполненного жидкостью пространства, в котором находятся органы брюшной полости, — используют усыпленную мышь, зафиксированную в лежачем положении. Сделайте продольный разрез до грудины, обнажив брюшную стенку.

Брюшная полость находится под брюшной стенкой и содержит жидкость, в которой находятся несколько иммунных клеток, включая макрофаги, лимфоциты, полиморфноядерные лейкоциты и тучные клетки.

Чтобы изолировать клетки с помощью перитонеального лаважа — аспирации внутрибрюшинного содержимого — введите ледяную питательную среду в брюшную полость без перфорации органов, избегая утечки крови. Холодная среда помогает поддерживать жизнеспособность клеток.

Осторожно встряхивайте мышь в течение достаточного времени, смешивая иммунные клетки со средой. Введите в полость пустой шприц. Медленно отсасывайте среду, восстанавливая большую часть введенной жидкости для лучшего выхода клеток.

Переложите клеточную суспензию в пробирку для сбора. Центрифуга для осаждения клеток в виде гранул. Выбросьте надосадочную жидкость. Повторно суспендируйте гранулу в подходящей среде.

Пластинируйте клетки и инкубируйте их при физиологических условиях, позволяя клеткам прилипать к культуральному сосуду. Добавьте специфические цитокины, которые связываются с их рецепторами на тучных клетках, индуцируя пролиферацию клеток.

Пролиферировавшие клетки готовы к последующему анализу.

Чтобы начать эту процедуру, распылите на усыпленную мышь 70% этанола, и закрепите ее на поролоновом блоке тыльной стороной вниз с помощью булавок. С помощью ножниц с тупым краем снимите кожу над брюшной полостью мыши и не повредите брюшную полость.

Затем введите 7 миллилитров ледяной среды RPMI в брюшную полость, осторожно вставив иглу 27-го калибра в брюшину. Не перфорируйте никакие органы и используйте пятно в области придаткового жира, чтобы снизить риск перфорации органа.

После инъекции встряхните мышь в течение 1 минуты, чтобы отсоединить клетки брюшины в среду RPMI. Не встряхивайте мышь слишком сильно, чтобы не повредить внутренние органы и не загрязнить кровью брюшную полость. Затем повторно используйте шприц, оснастив его новой канюлей 20-го калибра.

Сдвиньте внутренние органы в одну сторону, наклонив поролоновый блок и осторожно постучав им по скамье, чтобы облегчить аспирацию среды с другой стороны. Впоследствии введите иглу 20-го калибра, скосите вверх, чтобы отсасывать жидкость из брюшной полости мягко и медленно, чтобы избежать закупорки внутренними органами.

Соберите как можно больше жидкости. Затем извлеките иглу из шприца и перенесите собранную клеточную суспензию в сборную пробирку на лед. Выбросьте пробирку с образцом, если есть видимое загрязнение крови.

Центрифугируйте пробирку с чистой клеточной суспензией при 300 х г в течение 5 минут. Под стерильный капюшон сделайте аспирацию надосадочной жидкости. Повторно суспендируйте гранулы образца в холодной среде PMC и перенесите клеточную суспензию в колбу для клеточных культур площадью 25 квадратных сантиметров.

Затем добавьте факторы роста IL3 и SCF до конечных концентраций 10 нанограмм на миллилитр и 30 нанограмм на миллилитр соответственно. Инкубируйте клетки в течение примерно 48 часов при температуре 37 градусов Цельсия, до следующей процедуры.

10:35

Оценки воздействия наркотиков на основе антител на мышиных костного мозга и перитонеальных макрофагов активации

Похожие видео

0 Просмотры

08:59

Нейтрофильные внеклеточного ловушки, порожденных низкой плотности нейтрофилов получены перитонеальный лаваж жидкости посредником рост опухолевых клеток и вложения

Похожие видео

0 Просмотры

09:32

Изготовление кристаллических наноцеллюлозных встроенных чернил агарозного биоматериала для культуры тучных клеток, полученных из костного мозга

Похожие видео

0 Просмотры

04:32

Выделение мышью перитонеальных клеток полости

Похожие видео

0 Просмотры

07:26

Выделение функциональных сердечно иммунных клеток

Похожие видео

0 Просмотры

04:36

Выделение мезотелиальных клеток: метод выделения первичных мезотелиальных клеток из образца ткани сальника человека

Похожие видео

0 Просмотры

04:08

Анализ дегрануляции тучных клеток для изучения действия целевого химического вещества

Похожие видео

0 Просмотры

08:21

Выделение перитонеальных макрофагов Carry Out Gene Expression анализ По Toll-подобные рецепторы стимуляции

Похожие видео

0 Просмотры

09:07

Анализ функций тучных клеток In Vivo с использованием 'Mast Cell Knock-in'Mice

Похожие видео

0 Просмотры

11:31

Изоляция Брюшина производные тучных клеток и их функциональные характеристики с Ca2 +-изображений и дегрануляции анализов

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 22 августа 2026