$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Тучные клетки — белые кровяные тельца, содержащие цитоплазматические гранулы, заполненные медиаторами воспаления — играют важную роль во врожденных и адаптивных иммунных реакциях.
Чтобы изолировать тучные клетки соединительнотканного типа из брюшной полости — заполненного жидкостью пространства, в котором находятся органы брюшной полости, — используют усыпленную мышь, зафиксированную в лежачем положении. Сделайте продольный разрез до грудины, обнажив брюшную стенку.
Брюшная полость находится под брюшной стенкой и содержит жидкость, в которой находятся несколько иммунных клеток, включая макрофаги, лимфоциты, полиморфноядерные лейкоциты и тучные клетки.
Чтобы изолировать клетки с помощью перитонеального лаважа — аспирации внутрибрюшинного содержимого — введите ледяную питательную среду в брюшную полость без перфорации органов, избегая утечки крови. Холодная среда помогает поддерживать жизнеспособность клеток.
Осторожно встряхивайте мышь в течение достаточного времени, смешивая иммунные клетки со средой. Введите в полость пустой шприц. Медленно отсасывайте среду, восстанавливая большую часть введенной жидкости для лучшего выхода клеток.
Переложите клеточную суспензию в пробирку для сбора. Центрифуга для осаждения клеток в виде гранул. Выбросьте надосадочную жидкость. Повторно суспендируйте гранулу в подходящей среде.
Пластинируйте клетки и инкубируйте их при физиологических условиях, позволяя клеткам прилипать к культуральному сосуду. Добавьте специфические цитокины, которые связываются с их рецепторами на тучных клетках, индуцируя пролиферацию клеток.
Пролиферировавшие клетки готовы к последующему анализу.
Чтобы начать эту процедуру, распылите на усыпленную мышь 70% этанола, и закрепите ее на поролоновом блоке тыльной стороной вниз с помощью булавок. С помощью ножниц с тупым краем снимите кожу над брюшной полостью мыши и не повредите брюшную полость.
Затем введите 7 миллилитров ледяной среды RPMI в брюшную полость, осторожно вставив иглу 27-го калибра в брюшину. Не перфорируйте никакие органы и используйте пятно в области придаткового жира, чтобы снизить риск перфорации органа.
После инъекции встряхните мышь в течение 1 минуты, чтобы отсоединить клетки брюшины в среду RPMI. Не встряхивайте мышь слишком сильно, чтобы не повредить внутренние органы и не загрязнить кровью брюшную полость. Затем повторно используйте шприц, оснастив его новой канюлей 20-го калибра.
Сдвиньте внутренние органы в одну сторону, наклонив поролоновый блок и осторожно постучав им по скамье, чтобы облегчить аспирацию среды с другой стороны. Впоследствии введите иглу 20-го калибра, скосите вверх, чтобы отсасывать жидкость из брюшной полости мягко и медленно, чтобы избежать закупорки внутренними органами.
Соберите как можно больше жидкости. Затем извлеките иглу из шприца и перенесите собранную клеточную суспензию в сборную пробирку на лед. Выбросьте пробирку с образцом, если есть видимое загрязнение крови.
Центрифугируйте пробирку с чистой клеточной суспензией при 300 х г в течение 5 минут. Под стерильный капюшон сделайте аспирацию надосадочной жидкости. Повторно суспендируйте гранулы образца в холодной среде PMC и перенесите клеточную суспензию в колбу для клеточных культур площадью 25 квадратных сантиметров.
Затем добавьте факторы роста IL3 и SCF до конечных концентраций 10 нанограмм на миллилитр и 30 нанограмм на миллилитр соответственно. Инкубируйте клетки в течение примерно 48 часов при температуре 37 градусов Цельсия, до следующей процедуры.