$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните со взрослых мух Drosophila melanogaster, которым вводят кишечную палочку. В желаемые моменты времени после инъекции перенесите обезболенных мух в отдельные микроцентрифужные пробирки на льду, снижая их метаболическую активность.
Добавьте буфер и гомогенизируйте мух, разрушая ткани, высвобождая кишечную палочку и эндогенную микробиоту кишечника.
Переведите каждый гомогенат мухи, содержащий E. coli, в лунки с несколькими лунками. Оставшиеся лунки заполните буфером. Проводят серийное разведение гомогената, содержащего E. coli.
Разбавленную гомогенатную суспензию выложите из каждой лунки в виде отдельных пятен на питательную агаровую пластину, начиная с наименьшего разбавления. Дайте пятнам впитаться в агар. Инкубируйте пластину на ночь, чтобы обеспечить размножение кишечной палочки, образуя видимые колонии. Продолжительность инкубации имеет решающее значение для предотвращения формирования эндогенных колоний кишечной микробиоты мухи.
Подсчитайте колонии кишечной палочки для каждой мухи из разведений с подсчитываемыми неперекрывающимися колониями. Рассчитайте колониеобразующую единицу — жизнеспособную бактериальную нагрузку — в исходном гомогенате в разные моменты времени после инъекции.
Снижение нагрузки E. coli с течением времени предполагает выведение бактерий иммунной системой мухи.
Поместите подгруппу зараженных мух в отдельные микроцентрифужные пробирки на льду. Добавьте 250 микролитров PBS в каждую пробирку и используйте пестик для гомогенизации мух. Затем нанесите гомогенат на пластину из агара LB с помощью спирального плятера.
В качестве альтернативы, чтобы наложить гомогенат методом последовательного разведения, перенесите каждый гомогенат мухи в первый ряд 96-луночного планшета и заполните каждую лунку из оставшихся рядов 90 микролитрами PBS. С помощью многоканальной пипетки возьмите 10 микролитров из первого ряда, содержащего гомогенат мух, и распределите гомогенат во второй ряд.
Пипеткой вверх и вниз не менее 10 раз, чтобы тщательно перемешать гомогенат, затем возьмите 10 микролитров гомогената, и переложите его в следующий ряд. Повторите эту процедуру, используя оставшиеся ряды. Начиная с нижнего ряда, с помощью многоканальной пипетки возьмите по 10 микролитров из каждой лунки и нанесите их на пластину LB.
Убедитесь, что образцы распределены в виде дискретных пятен, которые не соприкасаются друг с другом. Повторяйте этот шаг до тех пор, пока не будут отобраны все лунки из каждого ряда, распределяя их в порядке убывания разбавления на пластине LB. Какой бы метод гальванизации ни использовался, следите за тем, чтобы пластины не зарастали, чтобы колонии оставались маленькими и дискретными.
Извлеките планшет из инкубатора, как только экспериментальные бактерии создадут видимые колонии, но до того, как колонии кишечной микробиоты дрозофилы станут заметными примерно через 24 часа.
Для спиральных пластин подсчитайте колонии, которые растут, с помощью автоматического счетчика колоний, который может оценить бактериальную нагрузку на миллилитр гомогената на основе количества и положения колоний на пластине.
Для точечных пластин вручную подсчитайте колонии для каждой мухи из того разведения, которое содержит от 30 до 300 колоний, и рассчитайте количество бактерий на миллилитр исходного гомогената.