JoVE Encyclopedia of Experiments
Иммунология
0 просмотров • 4:13 мин • July 8th, 2025
Возьмем суспензию клеток рака яичников человека. Добавьте в базальную мембрану матрицу среды, и держите на льду, чтобы избежать образования геля.
Загрузите смесь в шприц и введите подкожно в атимическую нюдовую мышь. Удалите иглу после того, как матрица пройдет гелеобразование, не допуская вытеснения смеси.
Отсутствие иммунного ответа у иммунодефицитной мыши сохраняет жизнеспособность введенных клеток. Белки внеклеточного матрикса геля и факторы роста обеспечивают сигналы, способствующие росту, способствуя образованию опухолей.
Опухолевые клетки сверхэкспрессируют поверхностно связанный рецептор фолиевой кислоты альфа-1, или FOLR1.
Принимайте антитела, специфичные для FOLR1. Добавьте флуоресцентный краситель и инкубируйте, обеспечивая конъюгацию красителя с антителами.
Внутривенно введите меченые антитела мыши, несущей опухоль под наркозом.
Антитела достигают опухоли через циркуляцию и связываются с FOLR1 на опухолевых клетках, флуоресцентно помечая поверхность клетки.
Выполнение флуоресцентной визуализации in vivo. При возбуждении краситель испускает флуоресценцию, облегчая оценку локализации антител в опухоли.
Диализуйте 0,5 миллилитра антитела с помощью диализной кассеты в 1 литре конъюгационного буфера. Через четыре часа переложите диализную кассету в свежий буфер и проводите диализ в течение ночи. Чтобы настроить реакцию конъюгации, добавьте 0,03 мкг IRDye 800CW на 1 мкг антитела в общем объеме 500 мкс.
Выдерживайте смесь в течение двух часов при температуре 20 градусов Цельсия. Затем очистите меченые конъюгаты с помощью обширного диализа против PBS. Оцените степень мечения, измерив абсорбцию красителя на 780 нанометрах и абсорбцию белка на 280 нанометрах.
Чтобы развить мышиные ксенотрансплантаты, аккуратно приподнимите кожу животного и отделите ее от подлежащего мышечного слоя. Медленно введите 100 микролитров клеточной суспензии под кожу иглой 26 калибра. Подождите несколько секунд, прежде чем вынимать иглу, чтобы среда базальной матрицы могла образовать полутвердую гелеобразную структуру вместе с клетками под кожей, что предотвратит выход смеси из места инъекции.
Чтобы выполнить визуализацию in vivo, введите меченное красителем антитело через хвостовую вену. После обезболивания мыши проверьте отсутствие реакции на педальные рефлексы, и расширьте вену, применив теплую воду. С помощью инсулинового шприца объемом 1 СС с иглой 26 калибра введите 25 мкг меченого антитела в объеме 100 мкл. В качестве отрицательного контроля пометьте и введите неспецифическое антитело изотипа IgG, которое не нацелено на раковые клетки.
Выполняйте визуализацию in vivo через 8, 24 и 48 часов после инъекции антител. В программном обеспечении для обработки изображений нажмите кнопку Инициализировать. Подтвердите, что температура ступени составляет 37 градусов по Цельсию. На панели управления настройте флуоресцентную визуализацию с помощью мастера визуализации и установите возбуждение на 773 нанометра, а излучение на 792 нанометра.
Перенесите мышь под наркозом в камеру визуализации и расположите ее на поле визуализации с помощью носового конуса. Когда все будет готово, нажмите «Получить» на панели управления для получения изображения, а затем нажмите «Автоэкспонирование». Сгенерированное изображение представляет собой наложение флуоресценции на фотографическое изображение, при этом интенсивность оптической флуоресценции отображается в единицах счета или фотонах.
В данном исследовании продемонстрирован метод создания ксенографтов у мышей с использованием клеток рака яичников человека, а также освещено применение антител, специфичных к FOLR1, для визуализации in vivo. Данный подход позволяет оценивать локализацию антител в опухолях с помощью флуоресцентной визуализации.
Данный метод позволяет биофармацевтическим группам подтверждать специфичность антител, нацеленных на опухоль, in vivo, что способствует валидации мишеней на ранних стадиях и снижению механистических рисков. Количественная оценка локализации антител в моделях ксенотрансплантатов обеспечивает прогностическую уверенность при выборе ведущих кандидатов и снижает вероятность биологических неудач на поздних этапах разработки. Данный рабочий процесс обеспечивает трансляционную преемственность от этапа поиска до доклинической оценки.
Данный метод вписывается в континуум разработки лекарственных средств, обеспечивая идентификацию перспективных соединений путем функциональной валидации кандидатов в опухолеспецифические антитела перед этапом доклинической оптимизации.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026