$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Принимайте спленоциты, истощенные эритроцитами, в буфере, содержащем кальций-чувствительный флуоресцентный краситель Indo-1 AM.
Внутриклеточные эстеразы расщепляют Indo-1 AM на непроницаемый для мембраны Indo-1, который связывается с ионами кальция, изменяя флуоресцентный сигнал Indo-1 с синего на фиолетовый.
Введение флуорофор-конъюгированных антиген-специфических антител, которые специфически связываются с соответствующими антигенами на клетках.
С помощью проточной цитометрии можно идентифицировать меченые флуорофорами В-клетки и измерить их отношение фиолетовой и синей флуоресценции Indo-1.
Теперь обработайте клетки антигенными липосомами, содержащими Fab-фрагменты IgM, конъюгированные с бислоями липосом.
Рецепторы В-клеток связываются с антигенами, связанными с липосомами, активируя связанные цитоплазматические тирозинкиназы и запуская активацию фосфолипазы-С гамма-2.
Активированная фосфолипаза-С расщепляет мембрану фосфолипид, фосфатидилинозитол 4,5-бисфосфат, образуя вторичные мессенджеры, в том числе инозитол 1,4,5-трисфосфат, или IP3.
IP3 связывается с IP3-зависимыми кальциевыми каналами на эндоплазматическом ретикулуме, высвобождая ионы кальция в цитоплазму.
Эти ионы кальция связывают несвязанные молекулы Indo-1, увеличивая фиолетовую флуоресценцию.
Более высокое соотношение фиолетовой и синей флуоресценции Indo-1 в меченых В-клетках подтверждает их успешную активацию антигенными липосомами.
Чтобы контролировать реакцию В-клеток на активацию антигенных липосом, ресуспендируйте 1,5 x 107 спленоцитов в буфере, загружающем кальциевый поток, и добавьте 1,5 микромоляра Индо-1 в клетки, несколько раз инвертируя раствор в пробирке для смешивания. После 30-минутной инкубации на водяной бане при температуре 37 градусов Цельсия в защищенном от света буфере добавьте в 5 раз больше объема буфера для загрузки потока кальция и центрифугируйте ячейки, меченные Indo-1.
Для гейтирования В-клеток окрашивают клетки антителами против CD5 и анти-B220 в 0,5 мл буфера загрузки при температуре 4 градуса Цельсия в течение 20 минут в защищенном от света месте. В конце инкубации промойте клетки в буфере для загрузки свежего кальциевого флюса и повторно суспендируйте гранулу в соотношении от 1 до 2 х 107 клеток на миллилитр свежего кальциевого флюса в беговом буфере для хранения на льду, защищенном от света, до проведения анализа.
Далее добавьте 0,5 миллилитра ячеек в закрытую 5-миллилитровую полистирольную трубку с круглым дном, и прогрейте ячейки до 37 градусов Цельсия на водяной бане. Через 3-5 минут перенесите трубку в камеру с водяной рубашкой при температуре 37 градусов Цельсия, подключенную к рециркуляционной водяной бане, и проведите трубку в водяной рубашке по проточному цитометру.
После сбора от 5000 до 10000 событий в секунду дайте ячейкам стабилизироваться в течение 15-30 секунд и повторно инициируйте сбор данных, собирая данные в течение не менее 10 секунд для установления фоновых показаний. На 10-секундной отметке быстро извлеките трубку из проточного цитометра, и добавьте соответствующую экспериментальную концентрацию антигенных липосом. Затем импульсируйте клетки вихрем и считывайте показания трубки на цитометре в течение еще 3-5 минут.