$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с покрытия покровного стекла биотинилированным поли-L-лизином для создания поверхности, богатой биотином.
Далее вводят стрептавидин — белок, который связывается с биотином, образуя молекулярный мостик для последующих взаимодействий.
После этого добавьте биотинилированные пептиды в клетке, связанные с основными комплексами гистосовместимости — pMHC вместе с молекулами адгезии.
Биотинилированные лиганды pMHC и молекулы адгезии взаимодействуют с определенными областями стрептавидина, обеспечивая их иммобилизацию.
Затем несколько раз промойте покровное стекло буферным физиологическим раствором и введите Т-клетки.
Наличие фотоклетки, светочувствительной химической группы, привязанной к определенному остатку на пептиде, препятствует спонтанному связыванию рецептора Т-клеток с пептидом.
Для контролируемой активации Т-клеток подвергайте пептиды в фотоклетке воздействию ультрафиолетового света.
Ультрафиолетовое излучение разрывает химическую связь между фотоклеточным пептидным комплексом, обнажая нативную форму пептида.
Рецепторы Т-клеток идентифицируют и прикрепляются к экспонированным пептидам, в то время как интегрины связываются с молекулами адгезии, запуская активацию Т-клеток.
Начните с добавления биотинилированного поли-L-лизина или био-ФАПЧ, разведенного 1:500 в дистиллированной деионизированной воде, в 8-луночное камерное покровное стекло. Выдерживать 30 минут при комнатной температуре. После инкубации промойте дистиллированной деионизированной водой, а затем высушите в течение двух часов при комнатной температуре.
Блокируйте поверхности с био-PLL-покрытием блокирующим буфером, состоящим из HEPES-буферного раствора с 2% BSA в течение 30 минут при комнатной температуре. После инкубации удалите блокирующий буфер с поверхностей с биофапчочным покрытием, не давая лункам высохнуть. Затем добавьте стрептавидин, и инкубируйте при температуре 4 градуса Цельсия.
Через час вымойте покрытые поверхности в HBS. Заполните и переверните камеру шиберных колодцев от 4 до 5 раз, удаляя HBS из лунок. Не допускайте пересыхания лунок.
Добавьте специфические биотинилированные фотоактивируемые пептидные лиганды главного комплекса гистосовместимости и молекулы адгезии для CD4-положительных Т-клеток или CD8-положительных клеток на поверхности, покрытые био-PLL. Беречь от света, выдерживать 1 час при комнатной температуре. После инкубации вымойте как и раньше, и оставьте в HBS до готовности к посеву. Наконец, добавьте 200 000 CD4-положительных или CD8-положительных Т-клеток, экспрессирующих соответствующий TCR в правильные лунки, и дайте клеткам прилипнуть при температуре 37 градусов Цельсия в течение 15 минут.
После того, как клетки прикрепились к поверхности и распространились по ней, они готовы к фотоактивации и визуализации. Для получения изображений используйте флуоресцентный микроскоп с инвертированным полным внутренним отражением, оснащенный УФ-совместимым объективом со 150-кратным увеличением. Мониторинг зондов в зеленом и красном каналах с помощью лазеров возбуждения 488 и 561 нанометров соответственно.
После установки предметного стекла камеры, содержащей Т-клетки, отрегулируйте настройки микроскопа, чтобы получить TIRF или эпифлуоресцентное освещение по мере необходимости. В режиме реального времени выберите поле клеток, которые выражают интересующие флуоресцентные зонды. Создание областей микронного масштаба для фотоактивации под отдельными клетками с помощью программного управления. Затем приступайте к приобретению.
Как правило, захватывается 80 временных точек с интервалом в 5 секунд между каждой. Это оставляет время для последовательного воздействия на 488 и 563 нанометра в случае экспериментов с двойным цветом. Затем, после получения 10 временных точек, фотоактивируйте выбранные области, открыв затвор цифровой диафрагмы на 1–1,5 секунды. После завершения интервальной съемки выберите новое поле ячеек и повторите процесс.