Оценка топологии иммунологических синапсов с помощью визуализации живых клеток

0 просмотров5:03 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Возьмем чашку для микроскопа с буфером, содержащим трансфицированные, обработанные суперантигенами эндотелиальные клетки человека, причем суперантигены объединены с молекулами MHC класса II.

Эти искусственные антигенпрезентирующие клетки совместно экспрессируют различные флуоресцентные белки на своих мембранах и цитоплазме.

Затем вводят Т-лимфоциты, которые взаимодействуют с суперантигенами на эндотелиальных клетках через Т-клеточные рецепторы, образуя стабильное межклеточное соединение, иммунологический синапс.

Это вызывает перестройку цитоскелета Т-лимфоцитов, инициируя распространение клеток и удлинение актина, что приводит к образованию инвадосомоподобных выступов, или ILP, обогащенных актином, адгезией и сигнальными молекулами.

Молекулы адгезии связывают специфические рецепторы на эндотелиальных клетках, усиливая взаимодействие.

Образование синапсов активирует сигнальные пути Т-лимфоцитов, повышая внутриклеточный уровень кальция и стабилизируя ILP.

ILP индуцируют локализованный изгиб мембраны в эндотелиальных клетках, образуя переходные поверхностные кольца.

Под флуоресцентным микроскопом проанализировать топологию синапсов, включающую темные круглые зоны смещения флуоресцентной цитоплазмы в эндотелиальной клетке, кололокализованные с различными флуоресцентными мембранными кольцами вокруг ILP, подтверждающие формирование иммунологических синапсов.

Чтобы получить изображение клеток в режиме реального времени, включите систему микроскопа и откройте соответствующее программное обеспечение для захвата изображений. Установите соответствующие параметры для автоматизированной многоканальной цейтраферной съемки, а также интервал для сбора данных от 10 до 30 секунд и общую продолжительность примерно от 20 до 60 минут.

Далее добавьте свежее масло в цель. Установите чашку для микроскопа, содержащую 0,5 миллилитра буфера А, на адаптер нагревательного столика и немедленно включите адаптер, предварительно установленный на 37 градусов Цельсия. После двух-трех минут равновесия с помощью пипетки объемом 20 микролитров добавьте остатки лимфоцитов, загруженных Fura-2, в установленную камеру микроскопа и включите светлую визуализацию.

Выберите путь света к окулярам и с помощью ручки грубой фокусировки приблизьте объектив к дну чашки микроскопа. Затем с помощью окуляра и ручки точной фокусировки найдите Т-клетки, расположенные на дне чашки, и с помощью элементов управления XY stage выберите поле, содержащее не менее 10 ячеек.

Когда соответствующие ячейки будут расположены, переключитесь со светлого поля на источник флуоресцентного света, а также с окулярного изображения на ПЗС-камеру. Оптимизируйте параметры съемки, а затем получите снимки Fura2-340 и Fura2-380 в состоянии покоя.

Одним из ключевых шагов на пути к получению успешных результатов является тщательная оптимизация параметров регистрации флуоресценции, обеспечивающая сбор достаточного сигнала и, в случае Fura-2, близкое к 1 базовому соотношению 340/380.

Когда время воздействия Fura-2 установлено, замените чашку с Т-клетками на чашку для микроскопа с эндотелиальными клетками. С помощью одноразовой переводной пипетки быстро удалите среду, и промойте ячейки один раз 1 миллилитром предварительно подогретого буфера А, затем замените промывку на 0,5 миллилитра свежего буфера А.

Используя эту цель, определить поля, в которых ярко флуоресцентные эндотелиальные клетки выглядят здоровыми, затем отрегулировать параметры регистрации для membrane-YFP и DsRed, как только что было продемонстрировано для Fura-2, следя за тем, чтобы средняя интенсивность флуоресцентного сигнала в каждом канале находилась в диапазоне от 25% до 75% динамического диапазона детектора.

Перед проведением эксперимента по визуализации живых клеток сделайте несколько интервалов изображений эндотелиальных клеток, чтобы установить исходный уровень с помощью автоматизированного программного обеспечения. Затем, вставив кончик пипетки небольшого объема в среду, расположенную близко к центру объектива, медленно дозируйте 5 микролитров концентрированных лимфоцитов, загруженных Фура-2, в центр поля визуализации микроскопа.

По мере того, как лимфоциты оседают, вносите тонкие корректировки в фокус, чтобы обеспечить сохранение границ раздела Т-клеток/эндотелиальных клеток в фокальной плоскости. При использовании объективов 40x и 63x оптимальным является от 10 до 20 ячеек на поле.

09:56

Супер-Resolution Imaging в естественных клеток-киллеров Иммунологические Synapse на стекло при поддержке Planar липидного бислоя

Похожие видео

0 Просмотры

08:35

Качественный и количественный анализ иммунной синапсов в системе человека с использованием визуализации проточной цитометрии

Похожие видео

0 Просмотры

09:37

Изображение иммунологического синапса человека

Похожие видео

0 Просмотры

18:11

Количественная Синапсы: Иммуноцитохимическая основе Пробирной количественно Synapse Количество

Похожие видео

0 Просмотры

10:31

В режиме реального времени Живая съемка Т-клеточного сигнального комплекса Формирование

Похожие видео

0 Просмотры

10:00

Визуализация иммунологических синапсов на двойной цвет времени закрытого вынужденного излучения истощения (STED) Наноскопия

Похожие видео

0 Просмотры

09:25

Эндотелиальных клеток Planar Модель для работы с изображениями иммунологии Synapse Dynamics

Похожие видео

0 Просмотры

14:28

Использование Комбинированные методики для определения роли плазмалеммы доставкой в ​​Axon ветвление и морфогенеза нейронов

Похожие видео

0 Просмотры

11:00

Визуализация актина и микротрубочек Cytoskeletons на B-клетки иммунной синапса, с помощью микроскопии простимулированное излучение истощения (интереса)

Похожие видео

0 Просмотры

14:02

Супер-разрешение изображения для изучения совместной локализации белков и синаптических маркеров в первичных нейронов

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 15 августа 2026