JoVE Encyclopedia of Experiments
Иммунология
0 просмотров • 5:00 мин • July 8th, 2025
Начните с лишенных сульфатов раковых клеток, экспрессирующих поверхностный белок, меченный GFP.
Добавьте меченый радиоактивными веществами сульфат и модифицированные нанотела против GFP — одноцепочечное антитело, несущее тирозин-сульфатионный мотив, и инкубируйте.
Клетки, лишенные сульфатов, интернализуют радиоактивно меченые сульфаты, включая их в клеточные компоненты.
Нанотело против GFP связывается с поверхностным белком, помеченным GFP, и эндоцитозируется в везикулу. Этот везикула транспортирует белковый комплекс нанотела-поверхности по определенным внутриклеточным путям, включая транс-сеть Гольджи, или TGN.
В ТГН сульфотрансфераза в присутствии субстрата переносит радиоактивный сульфат к специфическим остаткам тирозина на нанотеле, тем самым нанося ему радиоактивное пометку.
Промойте клетки. Далее лизируют клетки.
Центрифугируйте лизат для удаления крупного клеточного мусора. Выделите нанотела с помощью метода очистки на основе никелевых шариков.
Загрузите выделенную фракцию в гель SDS-PAGE, чтобы разделить меченое радиоактивным нанотелом на отдельные полосы.
Подвергнуть гель авторадиографии.
Полученная авторентгенограмма показывает затемненные участки, указывающие на присутствие радиоактивно меченного нанотела.
В колпаке для клеточных культур засейте от 400 000 до 500 000 клеток HeLa, которые стабильно экспрессируют репортерный белок, помеченный GFP, либо в 35-миллиметровые чашки, либо в 6-луночные кластеры, с полной средой, содержащей антибиотики. Инкубируйте клетки при температуре 37 градусов Цельсия с 7,5% углекислым газом в течение ночи. На следующий день удалите всю среду и дважды промойте клетки 1X PBS при комнатной температуре. Морить клетки бессульфатной средой в течение 1 часа при температуре 37 градусов Цельсия с 7,5% углекислого газа.
Тем временем в вентилируемом колпаке или стенде, предназначенном для работы с радиоактивностью, готовят сульфатную среду для мечения, содержащую 0,5 мликюри на миллилитр сульфата натрия S35 в бессульфатной среде. Далее смешайте двухъярусный сульф VHH в 1X PBS со средой для мечения сульфатами до конечной концентрации 2 мкг на миллилитр. Когда инкубация будет завершена, замените бессульфатные среды на 0,7 мл приготовленной смеси среды, содержащей сульфат натрия S35 и двухъярусный сульфат VHH. Инкубируйте клетки в течение 1 часа при температуре 37 градусов Цельсия в инкубаторе с содержанием углекислого газа 7,5%, предназначенном для работы с радиоактивностью.
После этого удалите маркировочную среду и промойте клетки два-три раза ледяным 1X PBS либо на охлаждающей пластине, либо на льду. Добавьте 1 миллилитр буфера для лизиса, дополненный двумя миллимолярами PMSF и 1X коктейлем ингибиторов протеазы. Инкубируйте клетки в течение 10-15 минут на качающейся платформе при температуре 4 градуса Цельсия. Затем соскребите и перенесите лизат в новую 1,5-миллилитровую пробирку, сверните лизат и поместите его на вращатель с концом вверх концом при температуре 4 градуса Цельсия на 10-15 минут. Центрифугируйте при 10 000 g и 4 градусах Цельсия в течение 10 минут, чтобы приготовить постядерный лизат. Перенесите постядерный лизат в 1,5-миллилитровую пробирку, содержащую подготовленные никелевые шарики, и инкубируйте в шейкере при температуре 4 градуса Цельсия в течение 1 часа, чтобы изолировать нанотела.
После этого промойте бусины три раза либо 1X PBS, либо буфером для лизиса, аккуратно гранулируя 1000 г в течение 1 минуты. Осторожно удалите весь промывочный буфер из шариков и добавьте 50 микролитров буфера для образца 2X. Варить при температуре 95 градусов Цельсия в течение 5 минут. Затем загрузите отваренные шарики в миди 12,5% SDS-PAGE гель и запустите в соответствии со стандартным протоколом PAGE до тех пор, пока эталонный краситель не достигнет конца разделительного геля. Закрепите разделительный гель примерно в 30 миллилитрах фиксирующего буфера на 1 час при комнатной температуре. Промойте гель три раза примерно 50 миллилитрами деионизированной воды, а затем высушите гель, как указано в текстовом протоколе. Когда высыхание будет завершено, используйте люминофорный скрин-имиджер для авторентгенографии геля.
В данном исследовании изучаются интернализация и радиоактивное мечение поверхностного белка с GFP-меткой в раковых клетках при дефиците сульфатов. Методология предполагает использование модифицированных анти-GFP нанотел для отслеживания внутриклеточных путей и модификаций белка.
Данный метод позволяет точно отслеживать посттрансляционные модификации и внутриклеточный транспорт поверхностных белков, что способствует валидации мишеней при поиске лекарственных средств в онкологии и нейробиологии. Путем количественного определения включения радиоактивно меченного сульфата в комплексы нанотело-белок метод дает понимание механизмов путей ретроградного транспорта, которые имеют решающее значение для оценки взаимодействия с мишенью и снижения рисков при разработке биопрепаратов. Данный подход повышает прогностическую достоверность на ранних этапах поиска за счет установления связи между событиями модификации белков и функциональными результатами их транспорта.
Метод применяется на этапах от раннего поиска до идентификации соединений-лидеров, обеспечивая проверку гипотез о транспорте поверхностных белков и их посттрансляционной модификации в каскадах валидации мишеней.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026