Мониторинг поступления помеченных GFP поверхностных белков в сеть Транс-Гольджи с использованием функционализированных нанотел

0 просмотров5:00 мин • July 8th, 2025

Начните с лишенных сульфатов раковых клеток, экспрессирующих поверхностный белок, меченный GFP.

Добавьте меченый радиоактивными веществами сульфат и модифицированные нанотела против GFP — одноцепочечное антитело, несущее тирозин-сульфатионный мотив, и инкубируйте.

Клетки, лишенные сульфатов, интернализуют радиоактивно меченые сульфаты, включая их в клеточные компоненты.

Нанотело против GFP связывается с поверхностным белком, помеченным GFP, и эндоцитозируется в везикулу. Этот везикула транспортирует белковый комплекс нанотела-поверхности по определенным внутриклеточным путям, включая транс-сеть Гольджи, или TGN.

В ТГН сульфотрансфераза в присутствии субстрата переносит радиоактивный сульфат к специфическим остаткам тирозина на нанотеле, тем самым нанося ему радиоактивное пометку.

Промойте клетки. Далее лизируют клетки.

Центрифугируйте лизат для удаления крупного клеточного мусора. Выделите нанотела с помощью метода очистки на основе никелевых шариков.

Загрузите выделенную фракцию в гель SDS-PAGE, чтобы разделить меченое радиоактивным нанотелом на отдельные полосы.

Подвергнуть гель авторадиографии.

Полученная авторентгенограмма показывает затемненные участки, указывающие на присутствие радиоактивно меченного нанотела.

В колпаке для клеточных культур засейте от 400 000 до 500 000 клеток HeLa, которые стабильно экспрессируют репортерный белок, помеченный GFP, либо в 35-миллиметровые чашки, либо в 6-луночные кластеры, с полной средой, содержащей антибиотики. Инкубируйте клетки при температуре 37 градусов Цельсия с 7,5% углекислым газом в течение ночи. На следующий день удалите всю среду и дважды промойте клетки 1X PBS при комнатной температуре. Морить клетки бессульфатной средой в течение 1 часа при температуре 37 градусов Цельсия с 7,5% углекислого газа.

Тем временем в вентилируемом колпаке или стенде, предназначенном для работы с радиоактивностью, готовят сульфатную среду для мечения, содержащую 0,5 мликюри на миллилитр сульфата натрия S35 в бессульфатной среде. Далее смешайте двухъярусный сульф VHH в 1X PBS со средой для мечения сульфатами до конечной концентрации 2 мкг на миллилитр. Когда инкубация будет завершена, замените бессульфатные среды на 0,7 мл приготовленной смеси среды, содержащей сульфат натрия S35 и двухъярусный сульфат VHH. Инкубируйте клетки в течение 1 часа при температуре 37 градусов Цельсия в инкубаторе с содержанием углекислого газа 7,5%, предназначенном для работы с радиоактивностью.

После этого удалите маркировочную среду и промойте клетки два-три раза ледяным 1X PBS либо на охлаждающей пластине, либо на льду. Добавьте 1 миллилитр буфера для лизиса, дополненный двумя миллимолярами PMSF и 1X коктейлем ингибиторов протеазы. Инкубируйте клетки в течение 10-15 минут на качающейся платформе при температуре 4 градуса Цельсия. Затем соскребите и перенесите лизат в новую 1,5-миллилитровую пробирку, сверните лизат и поместите его на вращатель с концом вверх концом при температуре 4 градуса Цельсия на 10-15 минут. Центрифугируйте при 10 000 g и 4 градусах Цельсия в течение 10 минут, чтобы приготовить постядерный лизат. Перенесите постядерный лизат в 1,5-миллилитровую пробирку, содержащую подготовленные никелевые шарики, и инкубируйте в шейкере при температуре 4 градуса Цельсия в течение 1 часа, чтобы изолировать нанотела.

После этого промойте бусины три раза либо 1X PBS, либо буфером для лизиса, аккуратно гранулируя 1000 г в течение 1 минуты. Осторожно удалите весь промывочный буфер из шариков и добавьте 50 микролитров буфера для образца 2X. Варить при температуре 95 градусов Цельсия в течение 5 минут. Затем загрузите отваренные шарики в миди 12,5% SDS-PAGE гель и запустите в соответствии со стандартным протоколом PAGE до тех пор, пока эталонный краситель не достигнет конца разделительного геля. Закрепите разделительный гель примерно в 30 миллилитрах фиксирующего буфера на 1 час при комнатной температуре. Промойте гель три раза примерно 50 миллилитрами деионизированной воды, а затем высушите гель, как указано в текстовом протоколе. Когда высыхание будет завершено, используйте люминофорный скрин-имиджер для авторентгенографии геля.

10:42

Определение экспрессии клеточной поверхности и эндоцитарной скорости белков в культурах первичных астроцитов с использованием биотинилирования

Похожие видео

0 Просмотры

09:05

Ретроградная нейроанатомический трассировки диафрагмальный двигательных нейронов у мышей

Похожие видео

0 Просмотры

09:12

Выбор ингибирующих нанотел, нацеленных на транспортер, с помощью электрофизиологии на основе твердой мембраны (SSM)

Похожие видео

0 Просмотры

10:52

Высокое содержание изображений Workflow по изучению Grb2 сигнализации комплексы выражением Клонирование

Похожие видео

0 Просмотры

16:16

Генетически-кодированные Молекулярные зонды по изучению G-белком

Похожие видео

0 Просмотры

11:56

Дифференциальный Маркировка клеточной поверхности и интернализированных белков после антитела Кормление Живая культивируемых нейронов

Похожие видео

0 Просмотры

11:57

Использование α-бунгаротоксина сайт связывания тегов по изучению ГАМК рецептора мембраны локализации и торговли

Похожие видео

0 Просмотры

15:13

Высокое разрешение Пространственно-временная Анализ рецептора Dynamics по одиночных молекул флуоресцентной микроскопии

Похожие видео

0 Просмотры

10:41

Использование GFP-меченый TMEM184A Построить подтверждения гепарин Receptor идентичности

Похожие видео

0 Просмотры

10:24

Обнаружение Лиганда-активированный G-белками рецепторы интернализации с помощью конфокальной микроскопии

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 29 августа 2026