Анализ на основе ламинарного потока для изучения взаимодействий между лейкоцитами и эндотелиальными клетками

0 просмотров3:54 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Начните с помещения предметного стекла с адгезивным цитокин-стимулированным эндотелиальным монослоем в проточную камеру.

Эти эндотелиальные клетки экспрессируют молекулы поверхностной адгезии, такие как селектины, и связанные с эндотелием миграционные сигналы, такие как хемокины.

Введите в проточную камеру лейкоциты, меченные флуоресцентными метками.

Когда лейкоциты протекают через эндотелиальный монослой, они взаимодействуют с активированными эндотелиальными клетками.

Селектины на эндотелиальных клетках связываются с соответствующими лигандами на лейкоцитах.

Селектин-лигандные взаимодействия являются слабыми и преходящими, что позволяет лейкоцитам катиться по эндотелиальному монослою под действием проточной среды.

Роллинг позволяет лейкоцитам взаимодействовать с хемокинами, активируя интегрины и способствуя стойкому аресту лейкоцитов.

Впоследствии лейкоциты распространяются по эндотелиальному монослою, что указывает на их потенциал для трансмиграции, важного шага в иммунном ответе.

Этот анализ помогает изучить механизм адгезии, расклеивания и трансмиграции лейкоцитов при их перфузии над эндотелиальными клетками.

Используйте один микромоляр зеленого флуоресцентного красителя для флуоресцентного нуклеинового кислотного окрашивания для флуоресцентного мечения лейкоцитов. После маркировки инкубируйте лейкоциты в течение 30 минут при температуре 37 градусов Цельсия. Затем центрифугируйте ячейки при 300-кратном избежании в течение 5 минут, чтобы гранулировать клетки.

Суспендируйте в фосфатно-солевом буфере для промывания клеток. Затем центрифугируйте клетки в 300 раз g в течение 5 минут. Исходя из скорости потока, суспендируйте 5 миллилитров клеток в буфере для анализа. Затем нагрейте водяную баню до 37 градусов по Цельсию.

Далее отложите в сторону 50-миллилитровый перфузионный шприц, и установите его на держатель шприца. Затем установите насос в режим вытяжки, при этом объем насоса равен 0 миллилитрам, а диаметр — 26,70 миллиметра. Затем прикрепите к шприцу муфту с люэровским замком, а трубку с локтевым люэровским соединителем подсоедините к муфте с люэровским замком. Затем прикрепите свободный конец трубки к проточной камере. Чтобы прикрепить лейкоциты к обездвиженным тромбоцитам, соедините предметное стекло со шприцем.

Чтобы перфузировать лейкоциты и затем прикрепиться к слою сосудистого или тромбоцитарного монослоя, прикрепите вторую трубку к 50-миллилитровой конической трубке, содержащей буфер для анализа, а затем заполните трубку с помощью пипетки объемом 1 миллилитров. Как только трубка будет заполнена, сожмите ее и подсоедините к проточной камере. Перед перфузией лейкоцитов добавьте в клеточную суспензию 3 миллимоляра хлорида кальция и 2 миллимоляра хлорида магния. Затем инкубируйте клетки при температуре 37 градусов Цельсия в течение 5 минут.

Чтобы удалить возможный воздух, застрявший в камере и в трубке, перед перфузией ячеек проведите с помощью пробирного буфера. Затем сожмите трубки, чтобы закрыть конец, и переключите трубку с буфера для анализа на клеточную суспензию, тем самым предотвратив попадание пузырьков воздуха внутри.

Чтобы первые ячейки прибыли, перфузируйте ячейки с соответствующей скоростью потока и напряжением сдвига. Продолжайте перфузию ячеек, поддерживая скорость потока и напряжение сдвига в течение двух минут. Затем сделайте шесть изображений вращающихся и отпугивающих клеток в течение 2-6 минут с помощью флуоресцентного микроскопа с 10-кратным увеличением, подключенного к цифровой камере.

09:01

Оценка лейкоцитов-эндотелиальной взаимодействий в условиях протекают в Ex Vivo Autoperfused Microflow палата Анализ

Похожие видео

0 Просмотры

08:05

Флуоресцентная маркировка красителей эритроцитов и лейкоцитов для изучения динамики потока в циркуляции сетчатки мышей

Похожие видео

0 Просмотры

06:47

Microfluidic Assay для оценки лейкоцитарной адгезии к человеческое индуцированных плюрипотентных стволовых клеток, полученных эндотелиальных клеток (hiPSC-ECs)

Похожие видео

0 Просмотры

14:16

Анализ Физиологические E-селектин-опосредованной лейкоцитов Роллинг на микрососудистой эндотелия

Похожие видео

0 Просмотры

12:43

Параллельные пластины палаты потока и непрерывной цепи потока для оценки эндотелиальных клеток-предшественников при ламинарном Стресс сдвиговом потоке

Похожие видео

0 Просмотры

03:10

Micro-Parallel Plate Flow Chamber Model for Studying Bacterial Adhesion to Human Endothelial Cells

Похожие видео

0 Просмотры

10:56

Роман трехмерного течения палаты по изучению устройства хемокинами направлены Экстравазация клеток, циркулирующих в физиологических условиях потока

Похожие видео

0 Просмотры

11:38

Расход Адгезия Анализ по изучению лейкоцитов набора на человека печеночных синусоидальных эндотелия в условиях напряжения сдвига

Похожие видео

0 Просмотры

11:26

В режиме реального времени изображений эндотелиальных межклеточных соединений Во нейтрофилов Трансмиграция в физиологических Flow

Похожие видео

0 Просмотры

07:40

Анализ адгезии при сдвиге стресса для изучения Т-лимфоцитами взаимодействий молекул адгезии

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 1 августа 2026