$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с помещения предметного стекла с адгезивным цитокин-стимулированным эндотелиальным монослоем в проточную камеру.
Эти эндотелиальные клетки экспрессируют молекулы поверхностной адгезии, такие как селектины, и связанные с эндотелием миграционные сигналы, такие как хемокины.
Введите в проточную камеру лейкоциты, меченные флуоресцентными метками.
Когда лейкоциты протекают через эндотелиальный монослой, они взаимодействуют с активированными эндотелиальными клетками.
Селектины на эндотелиальных клетках связываются с соответствующими лигандами на лейкоцитах.
Селектин-лигандные взаимодействия являются слабыми и преходящими, что позволяет лейкоцитам катиться по эндотелиальному монослою под действием проточной среды.
Роллинг позволяет лейкоцитам взаимодействовать с хемокинами, активируя интегрины и способствуя стойкому аресту лейкоцитов.
Впоследствии лейкоциты распространяются по эндотелиальному монослою, что указывает на их потенциал для трансмиграции, важного шага в иммунном ответе.
Этот анализ помогает изучить механизм адгезии, расклеивания и трансмиграции лейкоцитов при их перфузии над эндотелиальными клетками.
Используйте один микромоляр зеленого флуоресцентного красителя для флуоресцентного нуклеинового кислотного окрашивания для флуоресцентного мечения лейкоцитов. После маркировки инкубируйте лейкоциты в течение 30 минут при температуре 37 градусов Цельсия. Затем центрифугируйте ячейки при 300-кратном избежании в течение 5 минут, чтобы гранулировать клетки.
Суспендируйте в фосфатно-солевом буфере для промывания клеток. Затем центрифугируйте клетки в 300 раз g в течение 5 минут. Исходя из скорости потока, суспендируйте 5 миллилитров клеток в буфере для анализа. Затем нагрейте водяную баню до 37 градусов по Цельсию.
Далее отложите в сторону 50-миллилитровый перфузионный шприц, и установите его на держатель шприца. Затем установите насос в режим вытяжки, при этом объем насоса равен 0 миллилитрам, а диаметр — 26,70 миллиметра. Затем прикрепите к шприцу муфту с люэровским замком, а трубку с локтевым люэровским соединителем подсоедините к муфте с люэровским замком. Затем прикрепите свободный конец трубки к проточной камере. Чтобы прикрепить лейкоциты к обездвиженным тромбоцитам, соедините предметное стекло со шприцем.
Чтобы перфузировать лейкоциты и затем прикрепиться к слою сосудистого или тромбоцитарного монослоя, прикрепите вторую трубку к 50-миллилитровой конической трубке, содержащей буфер для анализа, а затем заполните трубку с помощью пипетки объемом 1 миллилитров. Как только трубка будет заполнена, сожмите ее и подсоедините к проточной камере. Перед перфузией лейкоцитов добавьте в клеточную суспензию 3 миллимоляра хлорида кальция и 2 миллимоляра хлорида магния. Затем инкубируйте клетки при температуре 37 градусов Цельсия в течение 5 минут.
Чтобы удалить возможный воздух, застрявший в камере и в трубке, перед перфузией ячеек проведите с помощью пробирного буфера. Затем сожмите трубки, чтобы закрыть конец, и переключите трубку с буфера для анализа на клеточную суспензию, тем самым предотвратив попадание пузырьков воздуха внутри.
Чтобы первые ячейки прибыли, перфузируйте ячейки с соответствующей скоростью потока и напряжением сдвига. Продолжайте перфузию ячеек, поддерживая скорость потока и напряжение сдвига в течение двух минут. Затем сделайте шесть изображений вращающихся и отпугивающих клеток в течение 2-6 минут с помощью флуоресцентного микроскопа с 10-кратным увеличением, подключенного к цифровой камере.