Локализованная поверхностная плазмонная резонансная томография для обнаружения белковой секреции из одной клетки

0 просмотров5:00 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Начнем со стеклянного сенсорного чипа с функционализированными золотыми наноструктурированными массивами с самоорганизующимся монослоем, содержащим карбоксильные группы.

Закрепите чип внутри микрофлюидной сборки и введите линкер для активации карбоксильных групп.

Добавьте пептидные лиганды, конъюгируя с активированными карбоксильными группами через линкеры.

Обработайте деактивирующим соединениесодержащим буфером, деактивирующим неспецифические участки связывания, и промойте буфером.

Сфокусируйте поляризованный свет на чипе. С помощью локализованной системы поверхностного плазмонного резонанса можно получить изображение решеток, проявляющихся в виде ярких квадратов на темном фоне.

Под резонансным углом электроны золота поглощают свет. Измерьте интенсивность отраженного света под соответствующим углом, чтобы сгенерировать отклик датчика.

Ввести белок-секретирующие гибридомные клетки, которые связываются с чипом и промываются.

Прикрепленные клетки выделяют белки, которые взаимодействуют с лигандами на соседней решетке.

Эти взаимодействия изменяют угол и интенсивность отраженного света, что приводит к изменению реакции сенсора, подтверждая секреторную активность клеток.

Для очистки и регенерации локализованной поверхности плазмонного резонанса, или микросхем LSPR, плазменный пепел мощностью 40 Вт в 300-миллилитровую смесь 5% водорода и 95% аргона в течение 45 секунд. Функционализируйте поверхность золота и наноструктуры сразу после плазменного озоления путем погружения чипа в двухкомпонентный раствор этанолтиола, состоящий из соотношения SPO и SPC в соотношении 3:1. Оставив чип в тиоловом растворе на ночь для образования самосборного монослоя, промойте его этанолом, а просушите газообразным азотом.

Загрузите микросхему LSPR в специально изготовленный микрофлюидный держатель, поместив микросхему на алюминиевую нижнюю часть. Затем вставьте чип между этой нижней частью и силиконовой прокладкой, а также прозрачной пластиковой верхней частью с помощью четырех винтов для зажима сборки.

Для типичного применения тиола на основе SPC нанесите 300 микролитров смеси 133 миллимолярных EDC и 33 миллимолярных NHS в соотношении 1:1 в деионизированной дистиллированной воде для активации карбоксильных групп тиолового компонента SPC. Подождав 10 минут, вручную промойте поверхность 10 миллимоляром PBS.

После этого конъюгируют активированную карбоксильную группу с интересующим лигандом путем нанесения капли на 300 микролитров раствора лиганда. Подождав 1 час и промыв поверхность 10 миллимолярным PBS, капните 300 микролитров 0,1 молярного этаноламина, содержащегося в PBS, на чип, чтобы свести к минимуму неспецифическое связывание. Подождав 10 минут, промойте этаноламин PBS, содержащим 0,005% Tween 20 или PBS-T20.

Затем поместите кусочек кварца над чипом, чтобы уменьшить колебания данных, связанных с изменением мениска. Держите чип влажным с помощью буфера PBS-T20 во время установки на микроскоп. Прикрепите трубку микрофлюидики к сборке и буферу потока до достижения устойчивого состояния. Затем плотно поместите узел наконечника LSPR в держатель образца с подогревом.

Оптическая установка для этого метода показана здесь. Свет от галогенной лампы пропускается через фильтр длиной 593 нанометра для устранения длин волн, которые не вносят вклад в наноплазмонный отклик. Затем свет линейно поляризуется, и образец освещается с помощью объектива с числовой апертурой 40x 1,4 для возбуждения плазмонных наноструктур золота. Рассеянный свет собирается объективом и пропускается через перекрестный поляризатор для уменьшения фонового сигнала от стеклянной подложки. Светоделитель 50/50 вставляется в собранный световой тракт для одновременного спектроскопического анализа и анализа изображений.

После того, как сборка и микроскоп находятся в равновесии в течение не менее двух часов, выровняйте микросхему с помощью джойстика так, чтобы центральная матрица была совмещена с оптоволоконным кабелем для спектроскопии. После культивирования и гранулирования гибридомных клеток методом центрифугирования их собирают. Затем проверьте их жизнеспособность, прежде чем вводить их в чипы LSPR. После этого вручную введите 50 микролитров клеточного раствора в чипы LSPR с помощью микропипетки. Наконец, промойте оставшиеся клетки в растворе свежей средой, не содержащей сыворотки, с помощью микрофлюидной перфузионной системы, чтобы подготовить чипы LSPR к визуализации.

09:09

Метку без Методика пространственно-временных изображений из одной клетки секрета

Похожие видео

0 Просмотры

11:17

Сравнительный анализ человеческого гормона роста в сыворотке, используя SPRI, Nano-SPRI и ELISA Анализы

Похожие видео

0 Просмотры

09:42

Генерация мышиных моноклональных антител с помощью гибридом технологии

Похожие видео

0 Просмотры

07:42

В естественных условиях обнаружения белок-белковых взаимодействий на микро-узорной поверхности

Похожие видео

0 Просмотры

10:41

Обнаружение токсинного транслокации в хост цитозоля от поверхностного плазменного резонанса

Похожие видео

0 Просмотры

05:21

Поверхностный плазмонный резонанс для изучения биомолекулярных взаимодействий с помощью сенсорного чипа

Похожие видео

0 Просмотры

09:35

В режиме реального времени измерения мембранного белка: рецептор взаимодействий с использованием поверхностного плазмонного резонанса (SPR)

Похожие видео

0 Просмотры

10:55

Этикетка-бесплатная изображений из одного белки выделяется из живущих клеток через iSCAT микроскопии

Похожие видео

0 Просмотры

06:12

Мультимодальная аналитическая платформа на мультиплексированном чипе поверхностной плазмонно-резонансной томографии для анализа подмножеств внеклеточных везикул

Похожие видео

0 Просмотры

06:19

Безметочный биоанализ комбинационного рассеяния комбинационного рассеяния без меток на основе Au@Carbon-точечных нанозондов

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 15 августа 2026