$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Возьмем, к примеру, мононуклеарные клетки периферической крови или PBMC, популяцию смешанных клеток, включающую лимфоциты и моноциты.
Добавьте флуоресцентный краситель жизнеспособности для распознавания мертвых клеток и коктейль антител с флуоресцентной меткой для идентификации различных типов клеток.
Флюорохром А-конъюгированные антитела связываются с поверхностными маркерами — CD3 на Т-клетках, γδ Т-клеточным рецептором или TCR на γδ Т-клетках и CD56 на естественных киллерах или NK-клетках.
В-конъюгированные антитела флуорохрома связываются с CD4 и CD8 на Т-клетках, CD19 на В-клетках и CD14 на моноцитах.
С помощью проточной цитометрии определите подмножества живых клеток.
В то время как CD8+ и CD4+ Т-клетки являются CD3+, CD4+ клетки находятся между CD3 одиночными положительными и CD3-CD8 двойными положительными клетками.
γδ Т-клетки экспрессируют γδ TCR и более высокий CD3 по сравнению с CD4+ и CD8+ клетками.
В-клетки и NK-клетки относятся к CD3-, но идентифицируются CD19 на В-клетках и CD56 на NK-клетках.
Моноциты идентифицируются по экспрессии CD14.
Чтобы подготовить PBMC к окрашиванию, переложите 100 микролитров каждого образца на 96-луночную пластину с V-образным дном. Центрифугируйте планшет при 350 умноженных на g в течение трех минут при комнатной температуре. Осторожно аспирируйте надосадочную жидкость, не нарушая клеточную гранулу. В каждую лунку добавьте 100 микролитров PBS, содержащего живой/мертвый фиксируемый краситель, который реагирует со свободным амином на белки, и осторожно ресуспендируйте смесь PBMC.
Впоследствии дайте планшету постоять 10 минут при комнатной температуре для мечения мертвых клеток. Для каждого образца приготовьте 30 микролитров смеси, содержащей все семь антител. На этом этапе также могут быть добавлены титруемые антитела против разных молекул-мишеней и в разных флуорохромах. Центрифугируйте 96-луночный планшет при 350-кратном g в течение трех минут при комнатной температуре и осторожно отсасывайте надосадочную жидкость, не нарушая клеточную гранулу.
Добавьте коктейль антител в каждую лунку и осторожно восстановите суспендию, не образуя пузырьков. Выдерживать 30 минут при комнатной температуре в темноте. Через 30 минут добавьте по 150 микролитров буфера для окрашивания в каждую лунку и центрифугируйте пластину при 350 умноженных на г в течение трех минут при комнатной температуре. Осторожно аспирируйте надосадочную жидкость, не нарушая клеточную гранулу, и повторно суспендируйте клетки в 200 микролитрах PBS. Теперь клетки готовы к анализу проточной цитометрии.
Чтобы начать эту стратегию гейтирования с двумя флуорохромами и семью маркерами, выберите ворота лимфоцитов и создайте точечную диаграмму с одним из двух флуорохров, используемых в этом протоколе, на каждой оси. Гейт на CD8-положительных Т-клетках, идентифицированных как CD3 и CD8 двойные положительные клетки в верхнем правом углу точечной диаграммы. Исключите тусклую популяцию CD8, которая может содержать NK-Т-клетки. Gate на CD4-положительных Т-клетках, идентифицированных как популяция между CD8-положительными Т-клетками и CD3-одиночными положительными популяциями.
Ворота на гамма-дельта Т-клетках, идентифицированных как клетки с высоким уровнем CD3. Подразделяют гамма-дельта Т-клетки на CD8-положительные и CD8-отрицательные. Ворота на NK-клетках, идентифицированные как популяция между CD3-положительными и CD3-отрицательными клетками. Подразделите NK-клетки на CD8-положительные и CD8-отрицательные Gate на В-клетках, идентифицированных как CD3-отрицательная, CD19-положительная популяция в правом нижнем углу точечной диаграммы.
Выберите ворота моноцитов и создайте точечную диаграмму с одним из двух флуорохромов, используемых в этом протоколе, на каждой оси. Гейт на CD3-отрицательную, CD14-положительную популяцию.