JoVE Encyclopedia of Experiments
Иммунология
0 просмотров • 4:21 мин • July 8th, 2025
Возьмем, к примеру, естественные киллеры, или NK-клетки. Добавьте лентивирусные векторы, состоящие из вирусных ферментов и сконструированных молекул РНК, кодирующих флуоресцентный белок.
Добавьте катионные полимеры и осадите клетки и вирусы.
Полимеры нейтрализуют отрицательные заряды как вируса, так и клетки, способствуя слиянию мембран
.РНК обратно транскрибируется в ДНК и интегрируется в геном хозяина, обеспечивая экспрессию флуоресцентных белков.
Добавляют среду, дополненную цитокином интерлейкином-2, или ИЛ-2.
IL-2 запускает внутриклеточную сигнализацию, которая способствует выживанию и пролиферации NK-клеток, сохраняя при этом экспрессию трансгенов.
Перенесите смесь в хорошо покрытую антителами жидкость, которая связывается со специфическими иммунорецепторами на NK-клетках, провоцируя их высвобождение противовирусных цитокинов.
Количественно оцените высвобожденные цитокины для оценки влияния полимера на продукцию цитокинов.
Добавьте флуоресцентные красители для маркировки ДНК некротических клеток.
С помощью проточной цитометрии можно идентифицировать живые клетки и количественно оценить сигнал флуоресцентного белка для измерения эффективности полимер-индуцированной трансдукции.
Суспензируйте первичные NK-клетки мыши или человека в лунках 24-луночного планшета в концентрации 0,5 x 10,5 на миллилитр среды с супернатантом лентивируса GFP при MOY 5, 10 и 20 и в присутствии полибрена, сульфата протамина или декстрана.
Центрифугируйте планшеты при 1 000 раз g в течение 60 минут. Затем, не сцеживая надосадочную жидкость, культивируют клетки в инкубаторе с температурой 37 градусов Цельсия, наполненном 5,2% углекислым газом, в течение ночи. После того, как клетки были промыты 10 миллилитрами PBS, используйте 2 миллилитра среды RPMI 1640 с IL-2 для ресуспендирования клеток.
За день до сбора клеток покройте 96-луночные пластины из полистирола с высоким содержанием белка 2,5 микрограммами на миллилитр моноклональных антител против NKG2D и инкубируйте пластины при комнатной температуре или в холодильнике на ночь. На следующий день используйте 100 микролитров PBS, чтобы промыть каждую лунку три раза.
Соберите трансдуцированные NK-клетки, сначала осторожно постукивая по пластинам. Затем добавьте по 100 микролитров клеток в каждую лунку из 96-луночных планшетов. Через 16–18 часов после активации используйте многоканальную пипетку для сбора надосадочной жидкости. Затем, используя рекомбинантные цитокины из набора ИФА, сгенерируйте стандартную кривую и количественно оцените цитокины, такие как интерферон-гамма, в надосадочной жидкости.
Чтобы проверить жизнеспособность NK-клеток, через четыре дня после трансдукции промойте клетки 10 миллилитрами холодного PBS два раза. Затем соберите клетки и используйте аннексин-V/7-амино-актиномицин D для их окрашивания. С помощью проточной цитометрии определите процент некротических клеток среди трансформированных NK-клеток, и проанализируйте данные в соответствии с текстовым протоколом.
В данной статье рассматривается трансдукция натуральных киллеров (NK-клеток) с использованием лентивирусных векторов и катионных полимеров. Этот процесс повышает выживаемость и пролиферацию NK-клеток, обеспечивая при этом экспрессию флуоресцентного белка.
Повышение эффективности лентивирусной трансдукции в первичных натуральных киллерах (NK-клетках) позволяет устранить критическое препятствие в разработке методов иммунотерапии, при которых низкая эффективность трансфекции ограничивает функциональную валидацию сконструированных рецепторов и трансгенов. Благодаря использованию катионных полимеров для преодоления электростатических барьеров, данный метод повышает достоверность прогнозов при снижении рисков разработки мишеней и обеспечивает масштабируемость рабочих процессов для терапевтических кандидатов на основе NK-клеток. Этот подход позволяет проводить количественную оценку экспрессии трансгенов и функциональности цитокинов, что помогает принимать обоснованные решения о целесообразности дальнейшей разработки на ранних этапах создания препаратов для иммунотерапии.
Данный метод вписывается в континуум от открытия до доклинических исследований, обеспечивая стабильную доставку генов в первичные NK-клетки, что является критически важным этапом для валидации химерных антигенных рецепторов (CAR) или иммуномодулирующих трансгенов перед тестированием in vivo.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 22 августа 2026