$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните со сдержанной мыши с иммунодефицитом NOD, у которой отсутствуют иммунные клетки и которая склонна к диабету.
Этой мыши предварительно вводят трансгенные бета-клетки поджелудочной железы, которые вырабатывают инсулин и экспрессируют ферменты люциферазы.
Возьмите шприц, содержащий предварительно обработанные спленоциты, полученные от мыши-диабетика. К спленоцитам относятся аутореактивные Т-клетки, обладающие способностью распознавать пептиды инсулина.
Вводите эти спленоциты в хвостовую вену мыши.
Спленоциты циркулируют и достигают поджелудочной железы, где аутореактивные Т-клетки распознают пептиды инсулина на бета-клетках и активируются.
Эти активированные клетки высвобождают цитотоксические молекулы, инициируя разрушение бета-клеток посредством аутореактивности.
Далее введите субстрат люциферазы в брюшину мыши. Субстрат диффундирует в этой области и проникает в бета-клетки.
Внутри клеток субстрат взаимодействует с ферментами люциферазой, производя люминесценцию.
Используя биолюминесцентную систему визуализации, делайте снимки через равные промежутки времени
Постепенное снижение люминесценции свидетельствует о разрушении трансгенных бета-клеток вследствие аутореактивности.
Разогрейте тело взрослого реципиента, мыши с NOD-scid, используя тепловую лампу в течение 5-10 минут, чтобы расширить вены. Суспендия раствора спленоцитов перед каждой инъекцией. На каждую мышь наберите в шприц по 100 микролитров предварительно подогретой суспензии спленоцитов. Убедитесь, что в воздухе нет пузырьков воздуха.
Затем поместите мышь в удерживающее устройство, прежде чем захватывать ее хвост недоминирующей рукой. Найдите одну из двух боковых хвостовых жилок. При необходимости аккуратно поверните хвост. Протрите хвост дезинфицирующей салфеткой, содержащей 70% изопропилового спирта.
Доминирующей рукой введите иглу под острым углом в центральную область хвоста. Скосом иглы вверх проведите иглой на несколько миллиметров по коже. Затем слегка надавите на шприц, чтобы ввести суспензию спленоцитов. Не позволяйте игле двигаться дальше внутрь или наружу во время инъекции. Успешные инъекции не вызывают обратного давления во время инъекции и проявляются в виде прозрачного или белого кровотока сразу после инъекции.
После инъекции аккуратно выпустите иглу из вены и слегка надавите на хвост дезинфицирующей салфеткой до тех пор, пока кровотечение не остановится. Освободите мышь от удерживающего устройства и аккуратно переложите ее в свежеподготовленную клетку. Не менее чем за 5 минут до визуализации введите мышке внутрибрюшинно соответствующую дозировку раствора D-люциферина с помощью шприца объемом 1 миллилитр и иглы 26 калибра.
После входа в программное обеспечение для обработки изображений на панели управления выберите «Инициализировать». Чтобы автоматически сохранить данные изображения, нажмите «Получение», а затем «Автосохранить в» и создайте соответствующие папки на компьютере. После того, как прибор завершит инициализацию, установите время воздействия на одну минуту.
Поместите мышь на прибор для визуализации в положение лежа с растопыренными конечностями и направьте ее голову в носовой конус. Аккуратно расплющите мышь, надавливая обеими руками на центр ее спинки, а затем разводя руки наружу и в стороны. Затем в программном обеспечении для обработки изображений выберите «Получить» и запишите все соответствующие детали эксперимента.