$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Поместите многоэлектродную решетку (MEA) в чашку Петри под стереомикроскопом. MEA состоит из электродов, расположенных в виде сетки с двумя отдельными зонами.
Добавьте в МЭА каплю плазмы крови. Поместите два среза спинного мозга, полученных из эмбрионов крысы, так, чтобы их вентральные стороны были обращены друг к другу.
Введите раствор тромбина, смешайте его с плазмой и инкубируйте. Тромбин вызывает коагуляцию плазмы, создавая биологический каркас, который способствует адгезии срезов на МЭА.
Добавьте питательную среду и инкубируйте при перемешивании, способствуя образованию клеточных связей между срезами и вызывая их слияние.
Под стереомикроскопом введите очаг поражения, разрезав тканевые соединения между срезами. Добавьте питательную среду и инкубируйте.
Во время инкубации нейроны растут поперек поражения, соединяя срезы.
Используя записывающую камеру, запишите электрическую активность от обоих срезов спинного мозга, чтобы оценить их регенерированные функциональные связи.
Поместите внутрь чашку Петри с покрытой микроэлектродной матрицей, под стереомикроскоп. Сфокусируйте решетку и центрируйте 6-микролитровую каплю куриной плазмы на электродной решетке. С помощью небольшого шпателя осторожно проведите два участка спинного мозга вентральными сторонами друг к другу в каплю плазмы.
Далее добавьте 8 микролитров тромбина вокруг куриной плазменной капли. Затем с помощью наконечника пипетки тщательно перемешайте и распределите куриную смесь плазмы и тромбина. Непосредственно перед тем, как куриная плазма и тромбиновая смесь станет слишком тягучей и начнет свертываться, отасуньте лишнюю жидкость. Затем закройте чашку Петри крышкой и поместите ее во увлажненную камеру. Поместите камеру внутрь инкубатора при температуре 37 градусов Цельсия примерно на час.
После инкубации осторожно добавьте в пробу 10 микролитров питательной среды. Закройте чашку Петри крышкой и поместите ее обратно в инкубатор еще на 45 минут. Затем поместите каждую из сборок многоэлектродной матрицы культур в роликовую трубку и добавьте 3 миллилитра питательной среды. Плотно закройте крышку и поместите роликовую трубку в роликовый барабан. Вращайте барабан со скоростью от 1 до 2 об/мин в инкубаторе при температуре 37 градусов Цельсия.
С помощью стерильных щипцов с резиновыми наконечниками извлеките сборки культур с многоэлектродной матрицей из роликовой трубки и поместите их в чашку Петри под стереомикроскопом. Сфокусируйте ткань и убедитесь, что два среза срослись.
Затем удерживайте сборку неподвижно и поместите лезвие скальпеля в паз многоэлектродной решетки рядом с срезами ткани. Держите скальпель довольно горизонтально, а затем поднимите рукоятку скальпеля вверх, но пусть лезвие скальпеля остается в канавке массива таким образом, чтобы лезвие катилось от основания к кончику, разрезая ткань, покрывающую канавку. При необходимости разорвите все остаточные тканевые соединения кончиком иглы 25-го калибра. Работайте только в области внутри канавки, и не трогайте нежные края.
Поместите многоэлектродные сборки культур обратно в роликовую трубку и добавьте к культурам 3 миллилитра свежей питательной среды. Затем поместите роликовую трубку обратно на роликовый барабан в инкубаторе при температуре 37 градусов Цельсия.
Установите узел культуры с многоэлектродной матрицей в записывающую камеру и нанесите на матрицу около 500 микролитров внеклеточного раствора. Затем установите сборку на микроскоп. Подождите 10 минут, пока система стабилизируется, а затем записывайте основную спонтанную активность каждого из электродов, обнаруживающих активность, в течение 10 минут.