JoVE Encyclopedia of Experiments
Нейронауки
0 просмотров • 4:00 мин • July 8th, 2025
Возьмем эмбриоидные тельца, или БЭ, полученные из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека. Эти БЭ состоят из трех зародышевых слоев.
Переложите EB в чашку для культур, покрытую матрицей, содержащую подходящую среду, и инкубируйте.
Матрица позволяет ЭБ прикрепляться к чашке с культурой.
Факторы роста и питательные вещества в этой среде помогают эктодермальным клеткам БЭ образовывать нейроэпителиальные агрегаты, расположенные по кругу, называемому розеткой.
Разрежьте фрагменты розетки и отсоедините их от блюда.
Соберите осколки и раскрутите их вниз.
Выбросьте надосадочную жидкость и снова суспендируйте фрагменты.
С помощью пипетки перемещайте фрагменты вверх и вниз, чтобы диссоциировать их.
Добавьте желаемое количество клеток в луночный планшет с матричным покрытием, содержащий среду для дифференцировки.
Компоненты дифференцировочной среды способствуют трансформации нейроэпителиальных клеток в полноценные нейрональные и глиальные клетки, первичные клетки нервной системы.
На второй день аспирируйте стандартный матричный раствор из заранее приготовленной 60-миллилитровой посуды и добавьте в чашку 5 миллилитров полной нейроэпителиальной индукционной среды или NRI. Работая под стереоскопическим микроскопом при 4-кратном увеличении и используя пипетку объемом 200 микролитров, соберите около 50 плавающих эмбриоидных тел и перенесите их в одну покрытую им чашку. Затем инкубируйте блюдо при температуре 37 градусов Цельсия и 5% углекислого газа.
На следующий день, на третий день процедуры дифференцировки, проверьте чашку под микроскопом при 10-кратном увеличении, чтобы убедиться, что все эмбриоидные тела прикреплены. Затем аккуратно выполните полную смену среды с помощью полной среды NRI. Меняйте среду NRI через день до седьмого дня, когда должны быть видны розеткообразные нейроэпителиальные агрегаты.
На седьмой день покройте 96-луночный планшет, набрав в каждую лунку 100 микролитров стандартной матрицы, разведенной в питательной среде. На восьмой день разрежьте розеткообразные агрегаты на фрагменты под стереоскопическим микроскопом при 10-кратном увеличении в стерильных условиях.
Обратите внимание, что розетки имеют свойство легко отделяться от блюда при прикосновении иглой. В этом случае частично разложите оторвавшуюся розетку кончиком иглы. Если розетки останутся частично прикрепленными, используйте пипетку объемом 200 микролитров, чтобы завершить отслоение фрагментов розетки.
Обрезка розеткой требует хороших навыков ручного труда и точности, чтобы избежать разрезания ненейроэктодермальных производных.
Далее соберите фрагменты розетки и их среду в 15-миллилитровую коническую трубку. Промойте посуду 2 миллилитрами среды NRI, чтобы восстановить все осколки. Затем раскрутите фрагменты розетки со скоростью 112 g в течение одной или двух минут.
После аспирации надосадочной жидкости аккуратно суспендировать гранулу в 1 миллилитре предварительно подогретого 1х DPBS без кальция и магния. Аккуратно пипетируйте фрагменты розетки вверх и вниз, чтобы частично диссоциировать их. Затем добавьте 4 миллилитра полной среды NRI и подсчитайте клетки с помощью трипанового синего и автоматического счетчика клеток.
Затем отсадите стандартный раствор матричного покрытия из 96-луночного планшета и поместите элементы в лунки с плотностью около 15 000 ячеек на квадратный сантиметр в среде NRI. Инкубируйте тарелку в течение ночи при температуре 37 градусов Цельсия и 5% углекислого газа. На 10-й день проведите полное изменение среды с использованием среды полной дифференцировки нейронов.
В данной статье описывается протокол дифференцировки индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека в нейрональные и глиальные клетки с использованием эмбриоидных телец (ЭТ). Процесс включает культивирование ЭТ в чашке с матриксным покрытием и использование среды для нейроэпителиальной индукции для стимуляции дифференцировки клеток.
Данный протокол позволяет масштабируемо генерировать нейрональные и глиальные клетки человека из иПСК, создавая релевантную для конкретных заболеваний систему in vitro для скрининга нейротоксичности и оценки механизмов сигнальных путей. Благодаря созданию смешанных нейральных культур, которые воспроизводят ключевые аспекты биологии нервной системы человека, данный метод позволяет проводить валидацию мишеней на ранних этапах и оценивать перспективные соединения в программах изучения нейродегенеративных заболеваний. Такой подход повышает достоверность прогнозов при доклинических испытаниях безопасности за счет снижения зависимости от моделей на животных и повышения трансляционной значимости.
Данный метод относится к этапу раннего поиска, позволяя проверять гипотезы о мишенях в нейронных системах человека до идентификации ведущих соединений и проведения исследований доклинической эффективности.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 22 августа 2026