Дифференцировка нейральных стволовых клеток в нейроны с помощью компартментализированного микрофлюидного устройства

0 просмотров4:12 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Возьмем микрофлюидное устройство, состоящее из резервуарных колодцев, соединенных двумя отсеками, соматическим и аксональным, разделенными барьером в виде микроканавок.

Компартменты и микробороздки покрыты субстратом клеточной культуры для облегчения клеточной адгезии.

Добавьте среду для нейральных стволовых клеток в каждую лунку и инкубируйте для подготовки устройства к культивированию клеток.

Выбросьте носители. Добавьте нейральные стволовые клетки, или НСК, в лунки соматического компартмента и позвольте клеткам прилипнуть.

Добавьте среду NSC в каждую лунку и инкубируйте в увлажненной камере, чтобы предотвратить испарение среды. Во время инкубации НСК размножаются.

Замените среду НСК на среду нейронной дифференцировки и инкубируйте.

Малые молекулы в этой среде индуцируют дифференцировку НСК в нейроны внутри соматического компартмента, причем их аксоны распространяются через микроборозды в аксональный компартмент.

Дифференцированные нейроны с расширенными аксонами готовы к дальнейшим исследованиям.

Для начала растворите поли-л-орнитин в дистиллированной воде для клеточных культур, чтобы получить 600 микролитров раствора на чип. Отсасывайте оставшуюся PBS из лунок, следя за тем, чтобы наконечник пипетки находился вдали от отверстия канала. Загрузите 150 микролитров рабочего раствора поли-л-орнитина в правую верхнюю лунку.

Подождите 90 секунд и добавьте 150 микролитров раствора в правую нижнюю лунку. Подождите пять минут и повторите процесс загрузки раствором для оставленных лунок. Затем поместите поддон увлажнителя с чипом при температуре 4 градуса Цельсия на ночь. Если вы используете чашку Петри, оберните ее парапленкой и поместите при температуре 4 градуса Цельсия на ночь.

Далее отсасывайте раствор из лунок, следя за тем, чтобы наконечник пипетки располагался подальше от отверстия канала, и дважды повторите загрузку правой и левой лунок по 150 микролитров стерильной воды каждая.

Приготовьте рабочий раствор ламинина. Загрузите правую и левую лунки по 150 микролитров рабочего раствора ламинина. Инкубируйте чипсы в лотке в течение двух часов при температуре 37 градусов Цельсия.

Промойте чипсы PBS без кальция и магния. Загрузите правую и левую лунки по 150 микролитров PBS каждая. Подождите пять минут. Отсасывайте PBS из лунок, и промойте чип фильтрующим материалом NSC. Загрузите правый и левый лунки по 150 микролитров каждого из носителей НБК. Инкубируйте чипсы в лотке на ночь в инкубаторе с температурой 37 градусов Цельсия и 5%CO2 для предварительного кондиционирования чипса.

Чтобы поместить человеческие нервные стволовые клетки в многокамерный чип, сначала подсчитайте концентрацию клеток с помощью гемоцитометра. Затем отсасывайте среду из лунок. Пипеткой внесите 5 микролитров клеточного раствора в верхнюю правую лунку, затем 5 микролитров в нижнюю правую лунку.

С помощью микроскопа проверьте, что клетки попали в канал. Подождите пять минут, чтобы ячейки прилипли к нижней части чипа. Пипеткой впрыскиваем примерно 150 микролитров среды NSC в правую и левую лунки. Инкубируйте при 5% CO2, 37 градусах Цельсия в подходящем увлажненном контейнере.

Через 48 часов аспирируйте среду NSC из лунок и замените ее средой нейронной дифференцировки, добавив по 150 микролитров в каждую верхнюю лунку и каждую нижнюю лунку. Культивируйте нейроны в инкубаторе с 5% CO2, 37 градусами Цельсия в поддоне увлажнителя.

10:50

Использование предварительно собранные пластиковые Microfluidic чипов для допускаться первичной мышиных нейронов

Похожие видео

0 Просмотры

07:15

Электро-поле индуцированной нейронной дифференциации клеток-предшественников в микрофлюидных устройств

Похожие видео

0 Просмотры

10:48

Генерация двигательных единиц человека с функциональными нервно-мышечными соединениями в микрофлюидных устройствах

Похожие видео

0 Просмотры

10:58

Изготовление микрожидкостных Устройство для дробления Нейрон Сома и Аксоны

Похожие видео

0 Просмотры

12:00

Подготовка E18 корковых нейронов крысы за раздробленности в микрожидкостных устройств

Похожие видео

0 Просмотры

07:26

BioMEMS: Кузнечно Новое сотрудничество между биологов и инженеров

Похожие видео

0 Просмотры

12:55

Оценка подвижности нейронных стволовых клеток Использование агарозном геле основе микрожидкостных устройств

Похожие видео

0 Просмотры

13:24

Multi-купе ЦНС Нейрон-глии сотрудничеству культуры микрожидкостных платформы

Похожие видео

0 Просмотры

06:03

Индуцированная электростимуляцией дифференцировка нейральных стволовых клеток и клеток-предшественников

Похожие видео

0 Просмотры

04:53

Компартментализированная культура первичных нейронов мыши с использованием пластиковых микрофлюидных чипов

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 15 августа 2026