JoVE Encyclopedia of Experiments
Нейронауки
0 просмотров • 4:25 мин • July 8th, 2025
Возьмем, к примеру, колонии человеческих эмбриональных стволовых клеток, или чЭСК, культивируемых на поддерживающей матрице.
Аспирируйте среду и добавьте ферменты, которые разрушают матрицу.
Промойте для удаления ферментов. Затем добавьте среду и пипетку, чтобы вытеснить разрыхленные колонии, разбив их на более мелкие кластеры.
Переложите гроздья в свежую среду и инкубируйте, позволяя гроздям образовать сферические агрегаты.
Дайте сферам осесть и удалите все мертвые клетки.
Инкубируйте со средой, содержащей основной фактор роста фибробластов, или bFGF, для пролиферации клеток.
Восполняйте запасы с помощью сред, содержащих постепенно снижающиеся концентрации bFGF, для облегчения дифференцировки клеток.
Ввести нейронную индукционную среду, способствующую дифференцировке hESC в нейральные стволовые клетки или НСК, превращая сферы в органоиды с нейронной розеткообразной структурой.
Добавьте антибиотики, чтобы предотвратить рост любых загрязняющих микробов во время длительного культивирования.
НСК дифференцируются на нейроны и глию, постепенно развивая органоиды в сложную структуру, напоминающую кору головного мозга.
Разбавьте стоковый раствор протеазы до рабочей концентрации, добавив 1 миллилитр стокового раствора в 5 миллилитров среды DMEM или F12 на каждую 6-луночную пластину hESCs. Аспирируйте и удалите питательную среду для клеточных культур, затем покройте hESCs раствором протеазы. Поместите пластины в инкубатор на 10 – 15 минут, или до тех пор, пока края колоний не округлятся вверх и не начнут отделяться от матрицы, но до того, как они полностью округляются вверх.
Наклоните пластину, аспирируйте раствор протеазы и аккуратно промойте клетки 2 миллилитрами DMEM или F12 для каждой лунки три раза. Убедитесь, что колонии остаются прикрепленными к матрице.
Поэтому очень важно, чтобы кусочки SL были подходящего размера. Поэтому убедитесь, что они находятся в запасе в течение соответствующего периода времени. Если они находятся там слишком короткое время, может быть очень трудно смыть их и разорвать. И если они находятся там слишком долго, они могут просто оторваться во время промывки.
Добавьте обратно от 1 до 1,5 миллилитров свежей среды mTESR в каждую лунку и промойте клетки планшета в 50-миллилитровую коническую трубку с помощью щадящего пипетирования, аспирируйте и диспенсируйте hESCs внутри планшета до тех пор, пока они не достигнут примерно 1/30 от своего первоначального размера. Теперь скопления колоний напоминают кусочки размером от 250 до 350 микрометров.
Перенесите клетки в одну колбу T75 со сверхнизким уровнем прикрепления, содержащую миллилитры среды mTESR без bFGF. На следующий день опрокиньте колбу так, чтобы живые ячейки оказались в углу. Если на дне колбы прилипло большое количество клеток, используйте 10-миллилитровую пипетку для переноса клеток в новую колбу.
Ожидайте высокой популяции мертвых клеток в течение первых нескольких дней. Как только клетки осядут, отсасывайте среду и мертвые клетки, оставляя около 10 миллилитров среды, содержащей живые клетки, и добавьте 20 миллилитров среды с низким содержанием bFGF, дополненную 30 нанограммами на миллилитр bFGF. Через двое суток проверьте клетки. Большинство клеток должны выглядеть здоровыми и яркими.
Однако, если более трети клеток кажутся темными, наклоните колбу и замените 20 миллилитров среды на 20 миллилитров среды с низким содержанием bFGF, дополненной 20 нанограммами на миллилитр bFGF. На 3-й день удалите половину среды и замените ее 15 миллилитрами среды HSC, дополненной 10 нанограммами на миллилитр bFGF.
На 5 день замените половину среды на 50 миллилитров нейроиндукционной среды. После этого через день заменяйте половину среды на нейроиндукционные среды. После трех недель в культуре добавьте 100-кратный пенициллин-стрептомицин в среду в конечной концентрации 1x при желании. Обновляйте половину носителей через день.
В данной статье описывается метод дифференцировки эмбриональных стволовых клеток человека (hESCs) в нейральные стволовые клетки (NSCs) и их последующего превращения в органоиды, напоминающие структуры коры головного мозга. Процесс включает ферментативную деградацию поддерживающего матрикса, кластеризацию клеток и использование специальных сред для стимуляции пролиферации и дифференцировки клеток.
Данный метод позволяет осуществлять масштабируемую генерацию органоидов человеческого мозга из hESCs, предоставляя физиологически релевантную модель для валидации мишеней на ранних этапах разработки нейротерапевтических средств. Благодаря созданию кортикоподобных структур с нейрональными и глиальными слоями, данный подход способствует механистическому снижению рисков при разработке кандидатов в препараты для терапии ЦНС посредством фенотипического скрининга на человеческих моделях. Этот метод повышает прогностическую точность принятия решений на доклиническом этапе за счет моделирования ранних процессов нейроразвития в воспроизводимой безсывороточной системе.
Данная методика вписывается в континуум от этапа поиска до доклинических исследований, обеспечивая валидацию мишеней в нейронных системах человека перед оптимизацией соединений-лидеров и поддерживая производство готовых к анализу органоидов для последующих кампаний по скринингу.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026