$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с перивентрикулярной ткани спинного мозга взрослой крысы, области, богатой нервными стволовыми/прогениторными клетками.
Переведите ткань в раствор, содержащий папаин и ДНКазу.
Папаин, протеолитический фермент, расщепляет внеклеточный матрикс ткани, в то время как ДНКаза разрушает загрязняющую ДНК, высвобождаемую из поврежденных клеток.
Механически диссоциируйте ткань для получения одноклеточной суспензии.
Переложите суспензию в пробирку и центрифугируйте ее. Удалите надосадочную жидкость. Ресуспендируйте клетки в растворе, содержащем белок альбумин и ингибитор протеазы.
Альбумин и ингибитор деактивируют папаин.
Нанесите клеточную суспензию на раствор, содержащий альбумин и ингибитор протеазы.
Разница в плотностях между слоями образует прерывистый градиент плотности.
Центрифуга оседает неповрежденными клетками, в то время как фрагменты клеточной мембраны остаются на границе раздела.
Выбросьте надосадочную жидкость. Ресуспендируйте клетки в питательной среде и наложите на них пластины.
Факторы роста избирательно способствуют пролиферации нейральных стволовых/прогениторных клеток и их агрегации в трехмерные нейросферы.
Чтобы начать выделение нервных стволовых клеток крысы, с помощью микроножниц измельчите рассеченную перивентрикулярную ткань на кусочки размером 1 кубический миллиметр. Затем приготовьте буфер для ферментативной диссоциации, добавив 5 миллилитров сбалансированного раствора соли Эрла во флакон папаина из набора для диссоциации папаина.
Поместите флакон при температуре 37 градусов Цельсия на 10 минут, чтобы папаин полностью растворился и раствор казался прозрачным. Далее добавьте 500 микролитров сбалансированного солевого раствора Earl's во флакон DNазы из набора для диссоциации, и аккуратно перемешайте.
Добавьте 250 микролитров раствора ДНКазы во флакон, содержащий папаин, и аккуратно перемешайте. Затем добавьте в флакон измельченную салфетку, примерно 0,2 грамма, и поместите флакон на платформу-качалку при температуре 37 градусов Цельсия на срок от 45 минут до одного часа.
После инкубации разотрите смесь с помощью пипетки объемом 10 миллилитров, чтобы диссоциировать оставшиеся кусочки ткани и получить мутную клеточную суспензию. Переложите клеточную суспензию в стерильную 15-миллилитровую коническую пробирку и центрифугируйте при 300 г в течение 5 минут при комнатной температуре.
Во время центрифугирования приготовьте овомукоидный раствор, смешав 2,7 миллилитра сбалансированного солевого раствора Эрла с 300 микролитрами восстановленного раствора ингибитора овомукоида альбумина в конической пробирке объемом 15 миллилитров. Добавьте в овомукоидный раствор 150 микролитров ранее приготовленного раствора ДНКазы, и перемешайте, перевернув пробирку.
Отбросьте надосадочную жидкость из гранулированных клеток и немедленно восстановите клеточную гранулу в разбавленной смеси альбумин-ингибитора ДНКазы. Затем приготовьте прерывистый градиент плотности, добавив 5 миллилитров раствора ингибитора альбумина в 15-миллилитровую пробирку, и с помощью 5-миллилитровой пипетки аккуратно и медленно наложите клеточную суспензию поверх раствора ингибитора альбумина.
Центрифугируйте образец при давлении 70 г в течение шести минут при комнатной температуре. По окончании выбросьте надосадочную жидкость и повторно суспендируйте клеточную гранулу в 1 миллилитр предварительно подогретой крысиной среды EFH, которая приготовлена, как описано в сопроводительном текстовом протоколе.
Подсчитайте плотность живых клеток с помощью гемоцитометра и поместите клетки в колбу для культуры T25 с плотностью 10 клеток на микролитр в EFH. Инкубируйте колбы при температуре 37 градусов Цельсия в 5% углекислом газе и дайте культурам расти без помех в течение одной недели, чтобы избежать скопления сфер.