Выделение нейральных стволовых клеток-предшественников из перивентрикулярной области спинного мозга взрослой крысы

0 просмотров4:30 мин • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Начните с перивентрикулярной ткани спинного мозга взрослой крысы, области, богатой нервными стволовыми/прогениторными клетками.

Переведите ткань в раствор, содержащий папаин и ДНКазу.

Папаин, протеолитический фермент, расщепляет внеклеточный матрикс ткани, в то время как ДНКаза разрушает загрязняющую ДНК, высвобождаемую из поврежденных клеток.

Механически диссоциируйте ткань для получения одноклеточной суспензии.

Переложите суспензию в пробирку и центрифугируйте ее. Удалите надосадочную жидкость. Ресуспендируйте клетки в растворе, содержащем белок альбумин и ингибитор протеазы.

Альбумин и ингибитор деактивируют папаин.

Нанесите клеточную суспензию на раствор, содержащий альбумин и ингибитор протеазы.

Разница в плотностях между слоями образует прерывистый градиент плотности.

Центрифуга оседает неповрежденными клетками, в то время как фрагменты клеточной мембраны остаются на границе раздела.

Выбросьте надосадочную жидкость. Ресуспендируйте клетки в питательной среде и наложите на них пластины.

Факторы роста избирательно способствуют пролиферации нейральных стволовых/прогениторных клеток и их агрегации в трехмерные нейросферы.

Чтобы начать выделение нервных стволовых клеток крысы, с помощью микроножниц измельчите рассеченную перивентрикулярную ткань на кусочки размером 1 кубический миллиметр. Затем приготовьте буфер для ферментативной диссоциации, добавив 5 миллилитров сбалансированного раствора соли Эрла во флакон папаина из набора для диссоциации папаина.

Поместите флакон при температуре 37 градусов Цельсия на 10 минут, чтобы папаин полностью растворился и раствор казался прозрачным. Далее добавьте 500 микролитров сбалансированного солевого раствора Earl's во флакон DNазы из набора для диссоциации, и аккуратно перемешайте.

Добавьте 250 микролитров раствора ДНКазы во флакон, содержащий папаин, и аккуратно перемешайте. Затем добавьте в флакон измельченную салфетку, примерно 0,2 грамма, и поместите флакон на платформу-качалку при температуре 37 градусов Цельсия на срок от 45 минут до одного часа.

После инкубации разотрите смесь с помощью пипетки объемом 10 миллилитров, чтобы диссоциировать оставшиеся кусочки ткани и получить мутную клеточную суспензию. Переложите клеточную суспензию в стерильную 15-миллилитровую коническую пробирку и центрифугируйте при 300 г в течение 5 минут при комнатной температуре.

Во время центрифугирования приготовьте овомукоидный раствор, смешав 2,7 миллилитра сбалансированного солевого раствора Эрла с 300 микролитрами восстановленного раствора ингибитора овомукоида альбумина в конической пробирке объемом 15 миллилитров. Добавьте в овомукоидный раствор 150 микролитров ранее приготовленного раствора ДНКазы, и перемешайте, перевернув пробирку.

Отбросьте надосадочную жидкость из гранулированных клеток и немедленно восстановите клеточную гранулу в разбавленной смеси альбумин-ингибитора ДНКазы. Затем приготовьте прерывистый градиент плотности, добавив 5 миллилитров раствора ингибитора альбумина в 15-миллилитровую пробирку, и с помощью 5-миллилитровой пипетки аккуратно и медленно наложите клеточную суспензию поверх раствора ингибитора альбумина.

Центрифугируйте образец при давлении 70 г в течение шести минут при комнатной температуре. По окончании выбросьте надосадочную жидкость и повторно суспендируйте клеточную гранулу в 1 миллилитр предварительно подогретой крысиной среды EFH, которая приготовлена, как описано в сопроводительном текстовом протоколе.

Подсчитайте плотность живых клеток с помощью гемоцитометра и поместите клетки в колбу для культуры T25 с плотностью 10 клеток на микролитр в EFH. Инкубируйте колбы при температуре 37 градусов Цельсия в 5% углекислом газе и дайте культурам расти без помех в течение одной недели, чтобы избежать скопления сфер.

08:48

Стабильной и эффективной генетической модификации клеток у мышей взрослых V-СВЗ для анализа нейронных стволовых клеток автономный и Неавтономные эффекты

Похожие видео

0 Просмотры

11:01

Выделение и культура взрослых данио мозга, полученных из нейросферах

Похожие видео

0 Просмотры

09:37

Выделение и расширение для взрослых собачьего гиппокампа Neural прекурсорах

Похожие видео

0 Просмотры

04:04

Выделение стволовых клеток из постнатального мозжечка мыши и дифференцировка в нервные клетки

Похожие видео

0 Просмотры

09:56

Продвижение выживания и дифференцировка нервных стволовых клеток с фибрином и фактор роста Коктейли после Тяжелая травмы спинного мозга

Похожие видео

0 Просмотры

11:27

Выращивание нервные стволовые клетки из обычных и нетрадиционных областях мозга взрослых грызунов

Похожие видео

0 Просмотры

09:52

Один мышь, двух культур: Выделение и культивирование взрослых нервных стволовых клеток из двух Нейрогенные зон отдельных мышей

Похожие видео

0 Просмотры

10:56

Neural трансплантации стволовых клеток в экспериментальной Contusive модели с повреждением спинного мозга

Похожие видео

0 Просмотры

08:26

Выделение стволовых нервных / клеток-предшественников из Перивентрикулярные региона взрослых крыс и человека спинного мозга

Похожие видео

0 Просмотры

09:24

Выделение и культуры взрослых нервные стволовые клетки от мыши зоны расположенный под мозолистым телом

Похожие видео

0 Просмотры

Последнее обновление: 15 августа 2026