JoVE Encyclopedia of Experiments
Нейронауки
0 просмотров • 3:42 мин • July 8th, 2025
Возьмите перфузированные фрагменты гиппокампа взрослой мыши в диссоциационную трубку, содержащую папаин и ДНКазу.
Поместите трубку на механический диссоциатор.
Диссоциатор механически разрушает ткань, расшатывая клетки, в том числе нейроны и глиальные клетки.
Папаин разрушает внеклеточный матрикс ткани, высвобождая клетки. ДНКаза разрушает загрязняющую ДНК.
Добавьте буфер, содержащий БСА, инактивируя ферменты.
Пропустите суспензию через сетчатый фильтр, чтобы удалить крупный мусор.
Центрифугируйте фильтрат. Откажитесь от надосадочной жидкости, богатой ферментами.
Снова суспендируйте клетки в буфере и переложите их в свежую пробирку.
Добавьте градиент плотности, перемешайте и наложите на смесь буфер.
Во время центрифугирования клетки и мусор образуют отдельные слои в зависимости от их плотности.
Удалите самый верхний буферный слой и средний слой мусора.
Добавьте буфер в нижний слой, содержащий ячейки, и перемешайте. Центрифугируйте и выбросьте надосадочную жидкость, содержащую среду градиента плотности.
Ресуспендируйте клетки гиппокампа в буфере для дальнейшего анализа.
С помощью щипцов перенесите кусочки ткани гиппокампа в С-образную трубку, и добавьте в трубку 30 микролитров смеси ферментов. Закрутив колпачок и закрутив до щелчка, поместите трубку в диссоциатор, и запустите соответствующую программу. Во время выполнения программы предварительно намочите 70-микронный сетчатый фильтр, помещенный на 50-миллилитровую коническую трубку, 2 миллилитрами буфера BSA.
После того, как программа диссоциации будет завершена, добавьте 4 миллилитра буфера BSA в диссоциированную ткань, и отфильтруйте смесь через клеточное сетчатое фильтр на 50-миллилитровой конической трубке. Далее добавьте 10 миллилитров DPBS в С-образную трубку. Затем закройте пробирку, аккуратно взболтайте раствор и профильтруйте его через сетчатое фильтр на 50-миллилитровой конической трубке. Центрифугируйте отфильтрованную клеточную суспензию. Выбросьте надосадочную жидкость, не потревожив гранулы, и храните гранулы.
Для удаления мусора суспендируйте гранулу с 1550 микролитрами холодного DPBS и переложите суспензию в промаркированную 15-миллилитровую коническую трубку. Затем добавьте 450 микролитров раствора для удаления холодного мусора и пипеткой вверх и вниз. Аккуратно обложите клеточную суспензию 1 миллилитром холодного DPBS, прижимая кончик к стенке конической трубки. Повторяйте процедуру до тех пор, пока общая накладка не составит 2 миллилитров.
Затем центрифугируйте подвеску при 3000 перегрузках в течение 10 минут с полным ускорением и полным торможением. Отсасывайте самый верхний слой. Затем проведите кончиком пипетки вперед и назад, чтобы аспирировать белый средний слой. Удалите как можно больше среднего слоя, не нарушая самый нижний слой. Далее добавьте 2 миллилитра холодного DPBS, и пипеткой вверх и вниз перемешайте. Затем центрифугируйте подвеску при перегрузке в 1000 раз в течение 10 минут с полным ускорением и полным торможением. После центрифугирования выбросьте надосадочную жидкость и повторно суспендируйте гранулу в 1 миллилитре буфера BSA.
В данной статье подробно описан протокол выделения клеток гиппокампа из тканей взрослых мышей с использованием ферментативной диссоциации и центрифугирования в градиенте плотности. Целью данного метода является получение жизнеспособных нейронов и глиальных клеток для дальнейшего анализа.
Получение жизнеспособных суспензий единичных клеток из таких сложных тканей, как гиппокамп, имеет решающее значение для последующего применения при валидации мишеней и фенотипическом скрининге. Данный протокол обеспечивает воспроизводимое выделение нейронов и глиальных клеток, что способствует механистическому снижению рисков в процессе разработки нейробиологических препаратов. Метод предоставляет релевантную заболеванию систему для оценки воздействия соединений на функцию клеток и модуляцию сигнальных путей.
Данный метод вписывается в континуум открытий — от проверки гипотез о мишенях до разработки анализа, обеспечивая надежный этап подготовки клеток для функциональной валидации.
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Похожие видео
0 Просмотры
Последнее обновление: 29 августа 2026