$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Культура увековечила мультипотентные клетки отического предшественника, или iMOP, в средах.
Факторы роста в средах способствуют пролиферации iMOP и образованию колоний, создавая отосферы.
Соберите отосферы и дайте им осесть под действием силы тяжести.
Удалите среду и добавьте дифференцировочную среду, в которой отсутствуют факторы роста. Наложите на пластины отосферы.
Отсутствие факторов роста инициирует дифференцировку iMOP в сенсорные эпителиальные клетки.
Соберите дифференцированные отосферы и дайте им осесть.
Удалите медиа и добавьте фиксатор для сохранения морфологии клеток.
Затем добавьте моющее средство для проникновения клеточных и ядерных мембран.
Добавьте блокирующий буфер для предотвращения связывания неспецифических антител.
Введение первичных антител, нацеленных на определенный маркер дифференцировки.
Добавьте флуорконъюгированные вторичные антитела, нацеленные на первичные антитела, флуоресцентно меченный фаллоидин для окрашивания актина и ДНК-связывающий краситель для окрашивания ядер.
Монтируйте отосферы.
С помощью флуоресцентной микроскопии визуализируйте окрашивание для подтверждения дифференцировки iMOP.
Через три дня после нанесения покрытия используйте гравитационное осаждение для сбора отосфер, как показано ранее. Приступайте к аспирации надосадочной жидкости и мягко ресуспендируйте клетки в 2 миллилитрах среды для дифференцировки сенсорного эпителия. Затем с помощью 10-миллилитровой пипетки большого диаметра перенесите отосферы в новую 60-миллиметровую тарелку. Дифференцировать отосферы в течение 10 дней, добавляя в культуру по 2 миллилитра свежей среды для дифференцировки через день.
После этого снова соберите отосферы под действием силы тяжести, седиментации и аспирируйте отработанную среду. Далее зафиксируйте отосферы в 4% параформальдегиде в 1X PBS на 15 минут при комнатной температуре. Затем удалите раствор формальдегида и промойте клетки в 1X PBS, содержащем 0,1% Triton X-100. Продолжайте с блокирования отосфер в 1X PBS, дополненном 10% козьей сывороткой и 0,1% Triton X-100.
Через час замените блокирующий буфер на буфер, содержащий соответствующий разведение антител Cdkn1b или Cdh1. Затем инкубируйте клетки в первичном антителе в течение ночи при температуре 4 градуса Цельсия, а на следующий день продолжайте иммуноокрашивание с использованием флуоресцентно меченных вторичных антител, фаллоидина и Хёхста, как описано в другом месте.
Чтобы подготовиться к визуализации, поместите монтажный материал на предметное стекло, а затем введите в него окрашенные отосферы. Далее сверху на образец укладывают покровный лист. Дав монтажному материалу высохнуть в течение ночи при температуре 4 градуса Цельсия, поместите предметное стекло на предметное стекло перевернутого микроскопа, оснащенного 16-битной ПЗС-камерой. С помощью воздушного объектива 20X 0,75 можно получать эпифлуоресцентные изображения, собирая данные из синего, зеленого, красного и инфракрасного каналов.